1.1 设计 细胞水平体外实验。
1.2 时间及地点 2019年4至12月在宁夏医科大学总医院人类干细胞研究所完成。
1.3 材料
1.3.1 细胞 人胎盘间充质干细胞来源于宁夏医科大学总医院人类干细胞研究所胎盘干细胞库,所用胎盘获家属知情同意并签订知情同意书;肺脏上皮细胞BEAS-2B购于中科院细胞库。
1.3.2 实验试剂 人间充质干细胞生长无血清培养基(瑞士Lonza公司);胎牛血清、PBS及 Tryple(Gibco公司);DME/F-12培养基(Hyclone公司);过氧化氢溶液(烟台市双双化工有限公司);CCK-8细胞增殖及毒性检测试剂盒(日本同仁公司);BCA蛋白含量检测试剂盒、全蛋白提取试剂盒(凯基生物技术股份有限公司);TBST缓冲液、Tris-甘氨酸-SDS电泳缓冲液、Tris-甘氨酸缓冲液(上海百赛生物技术股份有限公司);蛋白上样缓冲液、蛋白Marker(北京全式金生物技术有限公司);Bax、Bcl-2、Nrf2、Keap1抗体(美国Proteintech公司);β-actin抗体(武汉爱博泰克生物科技有限公司);总RNA提取试剂盒(重庆雷鸟生物科技有限公司);荧光定量检测试剂盒及反转录试剂盒(Thermo Scientific公司);外泌体提取试剂盒(美国Tribioscience Inc公司);所有引物均由上海生工生物工程有限公司合成。
1.3.3 实验仪器 倒置显微镜、荧光显微镜(日本Olympus有限公司);高速离心机(美国Thermo公司);酶标仪(美国Bio-Rad公司);二氧化碳恒温培养箱(德国Eppendorf公司)。
1.4 实验方法
1.4.1 肺上皮细胞氧化损伤模型的建立 将BEAS-2B细胞消化离心后制成细胞悬液,按照8×103/孔的密度种植于96孔板,平行设定8个复孔,放入培养箱中贴壁培养24 h,贴壁培养结束后,将培养液更换为含100,200,300,400,
500 μmol/L过氧化氢的DME/F-12完全培养基培养细胞4 h,以及用含300 μmol/L过氧化氢的DME/F-12完全培养基分别培养细胞2,4,6 h,培养结束后更换为含有CCK-8试剂的DME/F-12培养基,37 ℃避光孵育2 h,测定各孔的吸光度值,并计算各孔细胞的存活率,以50%-60%细胞存活率的刺激条件为最适刺激条件[4]。细胞存活率=[(实验孔吸光度值-空白孔吸光度值)/(对照孔吸光度值-空白孔吸光度值)]×100%。
1.4.2 Hoechst33258染色 将BEAS-2B细胞按照1.5×105/孔种植于6孔板中,用含300 μmol/L 过氧化氢的DME/F-12完全培养基培养4 h。培养结束后弃培养上清,PBS洗2次,加入40 g/L多聚甲醛固定细胞10 min,弃固定液,加入PBS洗2次后,加入500 μL Hoechst 33258溶液(5 mg/L)室温染色
5 min,荧光显微镜下观察细胞形态,细胞核出现皱缩、浓染被认为细胞出现凋亡。
1.4.3 人胎盘间充质干细胞来源外泌体的提取及鉴定 第3代人胎盘间充质干细胞用人间充质干细胞生长无血清培养基培养,待细胞汇合度达70%左右时更换新鲜的人间充质干细胞生长无血清培养基,培养24 h后收集上清液,4 ℃条件下2 500×g离心15 min,去除细胞或细胞碎片等,仔细将上清移入新的离心管中,0.22 μm滤器过滤去除大的微泡,将过滤后的上清加入Amicon浓缩管中5 000×g离心30 min,将浓缩后的培养上清按照外泌体提取试剂盒说明进行外泌体提取。取5 μL外泌体悬液加到透射电镜载样铜网上,干燥环境下放置20 min,磷钨酸负染后透射电镜观察外泌体形态。
1.4.4 人胎盘间充质干细胞来源外泌体作用于BEAS-2B细胞 将BEAS-2B细胞在含 300 μmol/L过氧化氢的DME/F-12完全培养基中培养4 h后进行分组,其中损伤组换DME/F-12完全培养基继续培养24 h,外泌体组更换含人胎盘间充质干细胞来源外泌体(10 mg/L)的DME/F-12完全培养基继续培养24 h。
1.4.5 q-PCR检测各组细胞相关基因的表达 按照总RNA提取试剂盒操作步骤进行RNA提取,按照反转录试剂盒操作程序进行反转录反应,RNA的量为200 ng,加入反转录引物
(1 μmol/L)1 μL,加无菌水至总体积为12 μL,65 ℃孵育5 min,
放置冰上预冷2 min,加入5×Reaction buffer 4 μL,RiboLock RNase 抑制剂1 μL,10 mmol/L dNTP 2 μL,RevertAid M-MuLV 反转录酶1 μL,至总体积为20 μL,25 ℃ 5 min,42 ℃
60 min,70 ℃ 5 min,得到反转录产物。20 μL q-PCR 反应体系:1 μL模板(反转录产物),1 μL引物混合物(10 μmol/L),
10 μL 2×SYBR green,8 μL水。反应条件:95 ℃ 10 min,
95 ℃15 s,60 ℃ 30 s,40 个循环;60-95 ℃绘制熔解曲线,以GAPDH为内参基因,以2-ΔΔCt(Ct 代表循环阈值)表示基因的表达量,引物序列见表1。
1.4.6 Western blot检测外泌体标志物及各组细胞相关蛋白的表达 各组细胞分别用细胞刮刮下,将细胞及培养液移至离心管中800×g离心10 min,吸尽培养基后加预冷的PBS洗2次,加入配制好的预冷的蛋白裂解液,置于4 ℃摇床上剧烈振荡,放置冰上4 min,此操作重复5次,使细胞充分裂解,4 ℃ 12 000×g离心5 min,取上清为全蛋白提取物,分装后冻存于-80 ℃冰箱。用BCA蛋白定量试剂盒测定外泌体及各组细胞的蛋白含量,配制10%的分离胶,取20 μg蛋白进行SDS-PAGE电泳,电泳结束后采用恒流300 mA转膜1 h,转膜结束后,取出PVDF膜,室温下封闭2 h,4 ℃孵育一抗[CD9(1∶2 000)、TSG101(1∶2 000)、Bax(1∶2 000)、Bcl-2
(1∶2 000)、Nrf2(1∶2 000)、Keap1(1∶2 000)、β-actin
(1∶2 000)]过夜,二抗(1∶5 000)孵育1 h,加显色液后进行曝光。
1.5 主要观察指标 ①BEAS-2B细胞存活率为50%左右时过氧化氢的浓度及处理时间;②q-PCR及Western blot检测BEAS-2B细胞中Bax及Bcl-2的表达,验证模型有效性;③q-PCR及Western blot检测氧化损伤组及外泌体处理组Bax、Bcl-2、Nrf2及Keap1的表达。
1.6 统计学分析 实验数据以x±s表示,采用SPSS 17.0统计软件进行统计分析,多组间比较采用单因素方差分析,两组间比较采用t 检验,P < 0.05为差异有显著性意义。