静电纺丝聚乳酸复合物纳米纤维材料与小鼠神经干细胞的生物相容性

doi:10.3969/j.issn.2095-4344.2014.47.008

中国组织工程研究 ›› 2014, Vol. 18 ›› Issue (47): 7585-7590.doi: 10.3969/j.issn.2095-4344.2014.47.008

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静电纺丝聚乳酸复合物纳米纤维材料与小鼠神经干细胞的生物相容性

刘畅，戎利民，李尚福，庞卯，杨阳，刘斌

中山大学附属第三医院脊柱外科，广东省广州市 510630

修回日期:2014-10-10 出版日期:2014-11-19 发布日期:2014-11-19
通讯作者: 刘斌，博士，副主任医师。中山大学附属第三医院脊柱外科，广东省广州市 510630
作者简介:刘畅，男，安徽省人，汉族，1990年生，2012年皖南医学院毕业，硕士。
基金资助:
国家自然科学基金(31170947，31470949，81472122)；广东省自然科学基金(S2012020011099，S2013010016413)；广东省科技计划项目(2012B060300008)；广州市科技计划项目(2013J4100062)；教育部博士点新教师基金(20100171120088)

Biocompatibility of electrospun poly(lactide-co-glycolide)/polyethylene glycol nanofibrous scaffold with mouse neural stem cells

Liu Chang, Rong Li-min, Li Shang-fu, Pang Mao, Yang Yang, Liu Bin

Department of Spinal Surgery, Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, Guangdong Province, China

Revised:2014-10-10 Online:2014-11-19 Published:2014-11-19
Contact: Liu Bin, M.D., Associate chief physician, Department of Spinal Surgery, Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, Guangdong Province, China
About author:Liu Chang, Master, Department of Spinal Surgery, Third Affiliated Hospital of Sun Yat-sen University, Guangzhou 510630, Guangdong Province, China
Supported by:
the National Natural Science Foundation of China, No. 31170947, 31470949, 81472122; Guangdong Natural Science Foundation, No. S2012020011099, S2013010016413; Guangdong Science and Technology Planning Project, No. 2012B060300008; Guangzhou Science and Technology Planning Project, No. 2013J4100062; New Teachers’ Fund for Doctor Stations of Ministry of Education of China, No. 20100171120088

摘要/Abstract

摘要：

背景：聚乳酸聚乙醇酸支架材料广泛应用于组织工程学领域，但其细胞黏附性较差、缺乏活性功能基团以及疏水性较强等缺点限制了其进一步的发展和应用。
目的：观察小鼠神经干细胞与静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇共聚物纳米纤维支架材料的体外相容性。
方法：自孕15 d CD-1小鼠胚胎大脑皮质分离培养小鼠神经干细胞。静电纺丝法制备聚乳酸聚乙醇酸和聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇纳米纤维支架材料，扫描电镜观察材料结构；取第5代神经干细胞分别接种于聚乳酸聚乙醇酸和静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇纳米纤维支架材料上，进行体外培养。
结果与结论：扫描电镜检测显示，两种支架材料呈现相互交联的多孔网状结构。聚乳酸聚乙醇酸组和静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇组纤维直径和孔隙率差异无显著性意义(P > 0.05)。CCK-8检测显示，两种材料无明显细胞毒性。神经干细胞在支架材料中生长良好，两组吸光度值均随培养时间延长而增大，两组在培养 1，3，5，7，9，11 d 吸光度值差异均有显著性意义(P < 0.05)。两组材料培养3，6，9 h，静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇组的细胞黏附率明显高于聚乳酸聚乙醇酸组(P < 0.05)。Hoechst染色显示两组细胞核质均染，形态正常，静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇组细胞数量明显多于聚乳酸聚乙醇酸组(P < 0.05)。扫描电镜观察显示，与聚乳酸聚乙醇酸组相比，静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇组神经干细胞在支架上的生长情况和基质分泌更好。结果说明，静电纺丝法制备的静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸/聚乙二醇纳米纤维支架细胞生物相容性良好，安全无毒，具备合适的孔径和孔隙率，适宜神经干细胞生长，是一种适用于组织工程优质的支架载体。

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

全文链接：

关键词: 生物材料, 材料相容性, 纤维纳米支架材料, 静电纺丝, 聚乳酸聚乙醇酸, 聚乙二醇, 复合支架, 生物相容性, 小鼠神经干细胞, 细胞毒性, 细胞增殖, 细胞黏附率, 国家自然科学基金

Abstract:

BACKGROUND: Poly(lactide-co-glycolide) (PLGA) scaffold is widely used in tissue engineering, but its poor cell adhesion ability and strong hydrophobicity limit its further development and application.
OBJECTIVE: To study the biocompatibility of electrospun poly (lactide-co-glycolide)/polyethylene glycol (PLGA-PEG) nanofibrous scaffolds with mouse neural stem cells in vitro.
METHODS: Neural stem cells were isolated from embryos of CD-1 mice at 15 embryonic days. Electrospinning was used to prepare PLGA and PLGA-PEG nanofibrous scaffolds. Scanning electron microscope was used for scanning observation of scaffolds. The 5th passage neural stem cells were seeded onto PLGA and PLGA-PEG scaffolds respectively, and cultured in vitro.
RESULTS AND CONCLUSION: Interconnected porous network structure was observed in both two kinds of scaffolds under the scanning electron microscope. Fiber diameters and porosities of PLGA and PLGA-PEG scaffolds showed no significant differences (P > 0.05). Cell Counting Kit-8 detection showed neural stem cells grew well on both two kinds of scaffolds and the absorbance value of two groups increased continuously with incubation time (1, 3, 5, 7, 9, 11 days). And there were statistically significant differences in the absorbance values between two groups at each time point (P < 0.05). Moreover, the cell adhesion rate was significantly higher in the PLGA-PEG group than in the PLGA group at 3, 6, 9 hours of culture (P < 0.05). Hoechst 33342 staining showed normal morphology and quality of the nuclei, and significantly more cells were observed in the PLGA-PEG group than the PLGA group (P < 0.05). Under the scanning electron microscope, compared with the PLGA scaffold, the PLGA-PEG scaffold was better for growth and matrix secretion of neural stem cells. In conclusion, PLGA-PEG nanofibrous scaffolds prepared by electrospinning are safe, non-toxic and suitable for neural stem cells growth with well biocompatibility, appropriate aperture and porosity.

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

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Key words: biocompatible materials, neural stem cells, mice, cell proliferation

中图分类号:

R318

刘畅，戎利民，李尚福，庞卯，杨阳，刘斌. 静电纺丝聚乳酸复合物纳米纤维材料与小鼠神经干细胞的生物相容性[J]. 中国组织工程研究, 2014, 18(47): 7585-7590.

Liu Chang, Rong Li-min, Li Shang-fu, Pang Mao, Yang Yang, Liu Bin. Biocompatibility of electrospun poly(lactide-co-glycolide)/polyethylene glycol nanofibrous scaffold with mouse neural stem cells[J]. Chinese Journal of Tissue Engineering Research, 2014, 18(47): 7585-7590.

图/表（结果） 2

2.1 小鼠神经干细胞的分离培养鉴定结果 分离得到的小鼠神经干细胞在悬浮培养条件下聚集成球。传代培养后，显微镜下观察可见神经球样克隆形成，见图1A。免疫荧光染色鉴定神经干细胞，可见Nestin染色阳性产物。见图1B-D。

2.2 静电纺丝纳米纤维支架的理化性能 利用静电纺丝技术制作的PLGA和PLGA-PEG纤维支架纤维交叉相叠，形态均一。孔隙结构均一性良好，孔间相互贯通。孔径为40-300 μm。PLGA和PLGA-PEG纤维直径分别为(533± 44) nm和(661±59) nm(P > 0.05)，孔隙率分别为(88.2± 2.1)%和(89.1±1.5)%，差异无显著性意义(P > 0.05)。两者的孔隙结构上差异无显著性意义(P > 0.05)，PLGA-PEG的纤维直径比PLGA稍粗(P < 0.05)，见图2A，B。

2.3 材料表面的细胞形态变化 Hoechst染色显示，PLGA-PEG和PLGA组细胞形态正常，核质均染，未见明显凋亡和坏死的细胞(图2E，F)。扫描电镜显示，复合两种材料的神经干细胞延展良好，伪足与纤维结合紧密(图2C，D)。Hoechst染色和扫描电镜观察均显示，PLGA-PEG上的细胞数量明显多于PLGA组。另外，小鼠神经干细胞与PLGA-PEG复合培养7 d后，免疫荧光显示复合材料的细胞仍然表达神经干细胞的标志蛋白(Nestin，图3)。

2.4 细胞毒性变化 相比较空白对照组，PLGA-PEG和PLGA组在不同浓度条件下的吸光度值均差异无显著性意义(P > 0.05)。另外，相同浓度下，两种材料之间的吸光度值也差异无显著性意义(P > 0.05，图4)。

2.5 细胞黏附率变化 随着培养时间延长，黏附于两组材料的细胞数量均明显增多。其中，在复合培养不同时间点，黏附于PLGA-PEG的细胞数量均明显多于PLGA(P < 0.05，图5)。

2.6 细胞增殖情况 两组材料的吸光度值均随着培养时间的延长而增高。在各个时间点，PLGA-PEG组的吸光度值均高于PLGA组(P < 0.05，图6)。

参考文献

[1] Zhu T, Tang Q, Gao H, et al. Current status of cell-mediated regenerative therapies for human spinal cord injury. Neurosci Bull. 2014;30(4):671-682.
[2] Bonfield W. Designing porous scaffolds for tissue engineering. Philos Trans A Math Phys Eng Sci. 2006;364(1838):227-232.
[3] Evans N R, Davies E M, Dare C J, et al. Tissue engineering strategies in spinal arthrodesis: the clinical imperative and challenges to clinical translation. Regen Med. 2013;8(1):49-64.
[4] Houle J D, Tessler A. Repair of chronic spinal cord injury. Exp Neurol. 2003;182(2):247-260.
[5] Ji W, Hu S, Zhou J, et al. Tissue engineering is a promising method for the repair of spinal cord injuries (Review). Exp Ther Med. 2014;7(3):523-528.
[6] Lai BQ, Wang JM, Ling EA, et al. Graft of a tissue-engineered neural scaffold serves as a promising strategy to restore myelination after rat spinal cord transection. Stem Cells Dev. 2014;23(8):910-921.
[7] Luo J, Borgens R, Shi R. Polyethylene glycol improves function and reduces oxidative stress in synaptosomal preparations following spinal cord injury. J Neurotrauma. 2004; 21(8):994-1007.
[8] 李森,史晓远,林卫,等.静电纺丝聚乳酸聚乙醇酸共聚物-丝素-胶原神经导管修复大鼠周围神经缺损[J].中国组织工程研究, 2012, 16(38):7087-7091.
[9] Chen SJ, Lin CC, Tuan WC, et al. Effect of recombinant galectin-1 on the growth of immortal rat chondrocyte on chitosan-coated PLGA scaffold. J Biomed Mater Res A. 2010; 93(4):1482-1492.
[10] Lu JM, Wang X, Marin-Muller C, et al. Current advances in research and clinical applications of PLGA-based nanotechnology. Expert Rev Mol Diagn. 2009;9(4):325-341.
[11] Park BH, Zhou L, Jang KY, et al. Enhancement of tibial regeneration in a rat model by adipose-derived stromal cells in a PLGA scaffold. Bone. 2012;51(3):313-323.
[12] Wattendorf U, Merkle HP. PEGylation as a tool for the biomedical engineering of surface modified microparticles. J Pharm Sci. 2008;97(11):4655-4669.
[13] 李晓然,袁晓燕.聚乙二醇-聚乳酸共聚物药物载体[J].化学进展, 2007,19(6):973-981.
[14] 路娟,刘清飞,罗国安,等.药物的聚乙二醇修饰研究进展[J].有机化学,2009,29(8):1167-1174.
[15] Sharma H S. Post-traumatic application of brain-derived neurotrophic factor and glia-derived neurotrophic factor on the rat spinal cord enhances neuroprotection and improves motor function. Acta Neurochir Suppl. 2006;96:329-334.
[16] 叶川,马敏先,张弢,等.Ⅰ型胶原修饰纯钛片促进人脂肪间充质干细胞增殖[J].中国组织工程研究,2014,18(25):4032-4037.
[17] 倪石磊,齐宏旭,鲍圣德,等.组织工程支架在犬急性脊髓损伤修复中应用的初步研究[J].中国微侵袭神经外科杂志,2005,10(9): 404-407.
[18] 王北岳,赵建宁.组织工程支架材料在脊髓损伤中的应用[J].医学研究生学报,2008,21(5):547-552.
[19] Mikami Y, Okano H, Sakaguchi M, et al. Implantation of dendritic cells in injured adult spinal cord results in activation of endogenous neural stem/progenitor cells leading to de novo neurogenesis and functional recovery. J Neurosci Res. 2004;76(4):453-465.
[20] Tavares I. Human neural stem cell transplantation in spinal cord injury models: how far from clinical application. Stem Cell Res Ther. 2013;4(3):61.
[21] Ogawa Y, Sawamoto K, Miyata T, et al. Transplantation of in vitro-expanded fetal neural progenitor cells results in neurogenesis and functional recovery after spinal cord contusion injury in adult rats. J Neurosci Res. 2002;69(6): 925-933.
[22] 庞丽云,王海,陈永霞,等.载紫杉醇聚乳酸聚乙醇酸共聚物纳米粒抑制人肝癌细胞HepG2的作用[J].中国组织工程研究, 2013,17(3):412-418.
[23] Ghasemi-Mobarakeh L, Prabhakaran M P, Morshed M, et al. Electrospun poly(epsilon-caprolactone)/gelatin nanofibrous scaffolds for nerve tissue engineering. Biomaterials. 2008; 29(34):4532-4539.
[24] Lim SH, Mao HQ. Electrospun scaffolds for stem cell engineering. Adv Drug Deliv Rev. 2009;61(12):1084-1096.
[25] Liu J, Bauer AJ, Li B. Solvent vapor annealing: an efficient approach for inscribing secondary nanostructures onto electrospun fibers. Macromol Rapid Commun. 2014;35(17): 1503-1508.
[26] Xu L, Sheybani N, Ren S, et al. Semi-Interpenetrating Network (sIPN) Co-Electrospun Gelatin/Insulin Fiber Formulation for Transbuccal Insulin Delivery. Pharm Res. 2014 [Epub ahead of print].
[27] 谭迎赟,白石,廖运茂.双相钙磷生物陶瓷/硫酸钙骨水泥多孔三维支架的生物性能[J].中国组织工程研究,2014,18(8):1161-1164.
[28] 李卫东,崔志明,徐冠华,等.壳聚糖增强型左旋聚乳酸与嗅鞘细胞的生物相容性[J].中国组织工程研究,2013,17(29):5316-5322.

引言

材料方法

设计：细胞学体外实验。

时间及地点：于2013年12月至2014年5月在中山大学附属第三医院细胞基因治疗转化医学研究中心完成。

材料：

实验动物：孕15 d SPF级CD-1小鼠1只，体质量100-120 g，由北京维通利华实验动物技术有限公司提供，许可证号：SCXK(京)2007-0001。

实验方法：

小鼠神经干细胞的分离培养：颈椎脱臼法处死小鼠，浸泡于体积分数75%乙醇30 min。在工作台内，消毒皮肤后，行腹部正中切口，暴露子宫角。剪下子宫置于培养皿中，PBS清洗3遍。眼科剪剪开胚胎包膜取出胚胎，剪开头皮，取大脑皮质脑组织，PBS反复冲洗，除去血块和脑膜组织。剪碎脑组织，用0.25%胰酶37 ℃消化15 min，随后加入含体积分数10%胎牛血清的培养基终止消化。反复轻柔吹打获得单细胞悬液，1 000 r/min离心10 min。重悬细胞，培养于含有B27、碱性成纤维细胞生长因子和表皮生长因子的DMEN/F12培养基。细胞培养并传至第5代备用。倒置显微镜下观察小鼠神经干细胞形态和生长情况。

小鼠神经干细胞的鉴定：免疫荧光检测Nestin的表达。PBS清洗细胞后，冰甲醇固定10 min。加入体积分数0.1% TritonX-100及6% BSA等体积穿膜封闭混合液，室温避光孵育1 h。加入兔抗小鼠Nestin一抗(1∶1 000)，4 ℃环境下孵育过夜。次日加入羊抗兔lgG二抗(1∶500)室温孵育 1 h。Hoechst33342染核3 min。倒置荧光显微镜下观察并拍照。

静电纺丝纳米纤维支架材料的制备：PLGA(PLA∶PGA=75∶25)和PEG(相对分子质量4 000)按照体积比例(15%和1.5%)溶解于六氟异丙醇，置于5 mL塑料注射器中，使用尖端磨钝后的27-G金属针头。电压设定为15 kV，调整进样速率为1.0 mL/h，收集器与针头的距离为12 cm。收集接收屏表面获得的静电纺丝PLGA-PEG纳米纤维支架材料。用同样制作方法获得静电纺丝PLGA纳米纤维支架材料。裁剪样品为8 mm×8 mm大小，紫外灯下照射30 min消毒备用。

纳米纤维支架理化性能的检测：两种支架材料真空喷金后，扫描电镜下观察支架结构。采用压汞法测定支架孔隙率。各取两种材料5个样本测定体积，抽真空后将汞充至支架周围，再从外部对汞加压，记录压力以及加压过程中进入孔隙中的汞的体积。

孔隙率=进入孔中汞体积/支架材料体积×100%。

材料的细胞毒性检测：使用医用角膜环转裁剪支架材料为直径7 mm的圆形，紫外灯消毒后置于96孔板中。DMEM培养基浸泡24 h，吸除培养基。调整神经干细胞细胞悬液浓度为1.0×10⁷ L^-¹，接种于内置材料的96孔板，每孔30 μL。随后按体积1∶2∶4∶8倍比稀释，即各组加入的培养基体积为30，60，120，240 μL，并设空白对照组。培养箱中培养48 h，吸除培养基，每孔加入DMEM培养基90 μL和CCK-8溶液10 μL，37 ℃孵育3 h，酶标仪测定 450 nm处的吸光度值。

材料的细胞黏附率测定：细胞浓度为1.0×10⁷ L^-¹的细胞悬液分别接种于内置材料的96孔板，37 ℃培养箱中孵育3，6，9 h。吸去培养基，加入0.25%胰酶消化计数。

细胞黏附率=黏附细胞数/细胞总数×100%。

材料的细胞增殖测定：细胞浓度为1.0×10⁷ L^-¹的细胞悬液分别接种于内置材料的96孔板，37 ℃培养箱中培养1，3，5，7，9，11 d。吸除培养基，每孔加入90 μL DMEM培养基和CCK-8溶液10 μL，37 ℃孵育3 h，酶标仪测定 450 nm处的吸光度值。

Hoechst 33342染色观察复合材料表面的细胞：第5代神经干细胞与材料复合培养3 d后，PBS漂洗，加入终浓度10 mg/L的Hoechst 33342避光孵育3 min，于倒置荧光显微镜下观察并拍照。

扫描电镜观察材料表面的细胞形态：第5代神经干细胞与材料复合培养7 d后。体积分数2.5%戊二醛4 ℃中固定 24 h。PBS漂洗后，梯度乙醇依次脱水7 min。自然干燥后，真空喷金，扫描电镜下观察细胞在支架上的形态和生长情况。

主要观察指标：PLGA组和PLGA-PEG组的细胞毒性、黏附和增殖。神经干细胞在材料表面的生长和形态特征。

统计学分析：采用SPSS 13.0软件对实验数据进行统计学处理，计量资料以x(_)±s表示。多组间均数差异的比较采用单因素方差分析法，组建数据差异的两两比较采用LSD和SNK法，P < 0.05为差异有显著性意义。

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

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讨论

神经干细胞是治疗脊髓损伤的一种理想的种子细胞。传统治疗方法治疗脊髓损伤往往很难达到令人满意的效果^[15]。随着近年组织工程研究的兴起^[16]，多项研究报道了试图利用组织工程学的方法治疗脊髓损伤^[17-18]。组织工程学治疗脊髓损伤涉及到两个重要因素，即种子细胞和支架材料^[3，19]。种子细胞可以补充丢失的神经元和胶质细胞，重新形成有功能的神经回路^[20]。神经干细胞可以自我更新，可以分化为神经细胞和胶质细胞，被认为是治疗脊髓损伤的首选种子细胞^[21]。实验成功从小鼠大脑皮质提取胚胎神经干细胞。提取的神经干细胞可以多次传代扩增，免疫荧光显示表达神经干细胞标志物(Nestin)。说明实验提取的神经干细胞可以作为种子细胞进行下一步的研究。

PLGA支架材料的作为生物材料已经得到广泛应用。选择一种可降解的、易于细胞黏附的、生物相容性良好的支架材料是组织工程的另一个重要方面。得益于良好的可降解性和力学特性，PLGA被广泛应用于生物医学领域^[22]。实验选用PLGA作为支架材料，利用静电纺丝技术制作纤维纳米支架材料^[23]。静电纺丝技术合成的纳米纤维支架直径小于细胞，且孔隙率较高^[24-26]。神经干细胞与支架材料复合培养后，扫描电镜观察发现神经干细胞在纤维支架表面生长良好，伪足和纤维黏合紧密。Hoechst染核发现细胞核形态正常、核质均染、未见明显的坏死的凋亡。可见，静电纺丝法制作的纤维支架材料可以很好的模仿细胞外基质，为细胞的生长和再生提供适宜的生长环境。另外，较高的比表面积和孔隙率也有利于细胞的黏附生长和代谢^[27]。

PLGA-PEG是在PLGA的基础上加入功能基团对其特性进一步完善。PLGA虽近年广泛应用于生物医学领域。但细胞黏附性较差、疏水性较强等缺点限制了其进一步的发展和应用^[10-11]。实验针对PLGA的缺点对其进行改性，在分子链中引入亲水性的生物相容性良好的聚乙二醇(PEG)，利用静电纺丝技术制作PLGA-PEG复合纳米纤维支架。扫描电镜观察结果显示，静电纺丝技术制备的PLGA和PLGA-PEG纳米纤维支架直径分别为(533±44) nm和(661±59) nm，孔隙率分别为(88.2±2.1)%和(89.1±1.5)%。表明两种材料在孔隙结构上没有太大差异，PLGA-PEG纤维直径比PLGA粗。细胞毒性检测结果发现，各浓度条件下细胞存活的数量无显著差异，表明PLGA和PLGA-PEG无明显的细胞毒性。通过CCK-8分别测定两种材料复合培养的神经干细胞的生长曲线，结果显示PLGA-PEG组在各个时间点的吸光度均明显高于PLGA组。表明神经干细胞在改性的PLGA表面的增殖能力得到提高。通过细胞计数法分别测定了神经干细胞与PLGA和PLGA-PEG材料表面的细胞黏附率，结果表明在各个时间点PLGA-PEG的细胞黏附率均明显高于PLGA组。细胞与材料复合培养扫描电镜和Hoechst染色观察，在PLGA-PEG材料表面黏附的细胞亦多于PLGA材料。另外，小鼠神经干细胞与PLGA-PEG纤维支架材料复合培养7 d后，神经干细胞仍表达神经干细胞标志基因Nestin。

综上所述，静电纺丝法制备的PLGA-PEG纤维纳米支架材料的纤维直径和孔隙率适合神经干细胞生长和代谢，生物相容性良好，不具有细胞毒性，可以作为组织工程的载体。然而实验仅仅局限于探讨体外生物相容性的研究，神经干细胞和静电纺丝PLGA-PEG材料是否具有良好的体内相容性还需要进一步的探索和研究^[28]。

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程
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Biocompatibility of electrospun poly(lactide-co-glycolide)/polyethylene glycol nanofibrous scaffold with mouse neural stem cells

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[1]	刘聪, 刘肃. miR-17-5p调控低氧诱导因子1α介导脂肪细胞分化及血管生成的分子机制[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1069-1074.
[2]	李偲, 赵婷, 谭戈, 郑雨林, 张若男, 吴艳, 唐俊明. 血小板源生长因子BB可促进骨骼肌成肌细胞增殖、分化与迁移[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(7): 1050-1055.
[3]	马泽涛, 曾晖, 王德利, 翁鉴, 冯松. 微小RNA-138-5p与软骨细胞增殖和自噬的关系[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(5): 674-678.
[4]	王玉姣, 刘丹, 孙嵩, 孙勇. 改良型富血小板纤维蛋白复合双相磷酸钙可促进兔骨髓间充质干细胞的活性[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 504-509.
[5]	周继辉, 姚猛, 王岩松, 李新志, 周游, 黄卫, 陈文瑶. 新型纳米支架对神经干细胞生物行为及相关基因表达的影响[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 532-536.
[6]	李黎, 马力. 磁性壳聚糖微球固定化乳糖酶及其酶学性质[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 576-581.
[7]	陈扬, 黄邓高, 高元慧, 王顺兰, 曹卉, 郑琳麟, 何浩伟, 罗思琴, 肖敬川, 张应爱, 张淑芳. 低强度脉冲场超声促进人脂肪间充质干细胞的增殖和黏附[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(25): 3949-3955.
[8]	周武, 王彬娉, 王雅雯, 程亚楠, 黄谢山. 转化生长因子β和骨形成蛋白2联合诱导小鼠成骨细胞系MC3T3-E1细胞的增殖与分化[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(23): 3630-3635.
[9]	李鑫平, 崔秋菊, 曾曙光, 冉高英, 张兆强, 刘显文, 方炜, 徐帅妹. β-磷酸三钙/壳聚糖水凝胶改性对牙髓干细胞生长与矿化的影响[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3493-3499.
[10]	刘珂珂, 段昕, 马向瑞, 张云涛. 以电纺丝膜为载体观察桂皮醛对高糖环境下成骨细胞的影响[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3500-3504.
[11]	刘利永, 周雷. 组织工程用水凝胶研发现状和发展趋势：基于专利信息的分析[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3527-3533.
[12]	何林, 吴稀, 何淞, 杨森. 经聚多巴胺涂层的羟基磷灰石生物陶瓷具有亲水性与细胞黏附性[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3540-3544.
[13]	周安琪, 唐渝菲, 吴秉峰, 向琳. 骨膜组织工程设计：共性与个性的结合[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3551-3557.
[14]	郎丽敏, 何生, 姜增誉, 胡奕奕, 张智星, 梁敏茜. 导电复合材料在心肌梗死组织工程治疗领域的应用进展[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3584-3590.
[15]	陈杰, 廖成成, 赵红波, 赵伟, 陈智威, 王彦. 组织工程尿道支架及其制备技术在尿道重建中的应用[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3591-3596.