设计:随机分组设计,对照动物实验。
时间及地点:实验于2008年7月至2010年7月在解放军总医院实验动物中心完成。
材料:选取两三个月龄雌性Wistar大鼠39只,体质量(284±6) g,由解放军总医院实验动物中心提供。
实验方法:
骨髓间充质干细胞的分离与培养:大鼠颈椎脱臼处死,无菌条件下取双侧股骨、胫骨,用肝素PBS混合液冲出骨髓腔中的骨髓,经Percoll密度梯度离心法分离培养并传代培养。第5代骨髓间充质干细胞进行移植。
心肌梗死动物模型的建立:按照Pfeffer等报道的方法略加改进复制大鼠急性前壁心肌梗死模型。用1%戊巴比妥钠40-50 mg/kg腹腔注射麻醉大鼠,经口气管插管呼吸机辅助呼吸。常规消毒铺单,距胸骨左侧约0.5 cm处沿3、4肋间作纵形切口进胸,暴露心脏,在左心耳下缘与肺动脉圆锥间距主动脉根部2.0-3.0 mm处,以左心耳的下缘为标记,结扎左冠状动脉前降支,观察结扎区域变白,局部心肌运动减弱,两个以上肢体导联或胸导出现ST段抬高 0.2 mV以上提示结扎成功。
细胞移植:在梗死心肌组织及其边缘,分5个点用特制注射器将细胞悬液注入心肌组织,缓慢推注,以防悬液外流,注射完毕后关闭胸腔,缝合肌肉和皮肤。39只Wistar大鼠随机分为3组:①DMEM对照组(n=12):大鼠心肌梗死后30 min注射100 μL DMEM培养基。②骨髓间充质干细胞治疗组(n=15):于心肌梗死后30 min接受同种异体骨髓间充质干细胞移植治疗(100 μL,含5×106骨髓间充质干细胞)。③骨髓单个核细胞治疗组(n=12):于心肌梗死后 30 min接受同种异体骨髓单个核细胞移植治疗(100 μL,含5×107骨髓单个核细胞)。其中两个治疗组各3只动物的移植细胞预先用BrdU给予标记。
指标检测:于细胞移植8周后进行。结扎右颈动脉远心端,近心端插入充满肝素生理盐水的PE-50导管,记录主动脉及左心室压力曲线,并测量主动脉收缩压(SBP)、舒张压(DBP)、左室收缩压(LVSP)、舒张末压(LVEDP)及左室内压最大上升和下降速率(±dp/dtmax),将左室内压最大上升和下降速率(±dp/dtmax)与左室收缩压的比值作为校正值。
然后处死动物,开胸取出心脏,用PBS冲洗修剪后用电子天平(精确到0.1 mg)分别称取左、右心室实际质量(LVAW、RVAW),将其与体质量相比,得到左、右心室的相对质量(LVRW、RVRW)。直接测量左心室长轴长(二尖瓣环至心尖)。
在心脏长轴中点处垂直于长轴将左室一分为二,心尖瓣石蜡包埋,3 μm厚切片常规苏木精-伊红染色,观察心肌组织的梗死情况、有无炎症反应和血管瘤形成等其他不良反应出现。
上述3 μm厚截面标本行Masson三色染色制成病理切片,用OLYMPUS IX71自动显微照相系统及微机图像分析系统测定左心腔面积、左心室截面面积(包括左心腔面积)、截面最长径(Dmax)和最短径(Dmin)、瘢痕弧长以及心内膜和心外膜周长,分别计算心肌梗死面积、左室球形指数和扩张指数,公式如下:
梗死面积=瘢痕弧长/[(外周长+内周长)/2]×100%
左心室球形指数=左心室长轴长/左心室短轴长
(截面直径即短轴长,D= )
左室扩张指数=左心腔面积/左心室截面面积
取心肌组织3 µm石蜡切片,用天狼猩红饱和苦味酸液染色20 min,Harris苏木精液淡染细胞核。偏振光显微镜下Ⅰ型胶原纤维呈红色或黄色,排列紧密,具强双折光性;Ⅲ型胶原纤维呈绿色,细纤维,弱双折光性。于左室梗死区和非梗死区室间隔非血管区随机选择8个视野(×200),用上述照相-分析系统检测Ⅰ、Ⅲ型胶原面密度代表其胶原容积分数(CVF)。
取梗死区及其边缘心肌组织,切片,分别以鼠抗Ⅷ因子相关抗原单克隆抗体、鼠抗BrdU单克隆抗体以及抗心肌肌钙蛋白T(cTnT)单克隆抗体和鼠抗结蛋白(desmin)单克隆抗体作为第一抗体,按SP法常规操作进行免疫组织化学鉴定,分别检测梗死区和梗死边缘区血管密度、观察BrdU标记的细胞能否在心肌组织存活以及梗死区有无平滑肌细胞和心肌细胞新生。
其中BrdU免疫组化染色阳性部位为细胞核。Ⅷ因子染色每张切片在梗死区和梗死边缘区分别随机选择5个视野,在高倍镜下计数血管数目,其平均数代表每个高倍视野的血管数目。
统计学分析:数据由第一作者采用SPSS 10.0软件进行分析。测量数据以x±s表示,各组间比较采用单因素方差分析和秩和检验,P < 0.05表示差异有显著性意义。