1.1 设计 对比观察动物实验。
1.2 时间及地点 于2018年10月至2019年1月在四川省人民医院骨科完成。
1.3 材料
1.3.1 实验动物 6只SPF级3周龄断乳前SD大鼠购于南方医科大学实验动物中心,雌雄各半,180-220 g,许可证号:SCXK(粤)2011-0015。单笼饲养,自然光照及饮水,环境温度20-24 ℃,空气湿度50%-55%。适应性喂养1周后诱导模型。
1.3.2 试剂 聚集蛋白聚糖抗体、Ⅱ型胶原蛋白抗体、Sox9抗体和血管内皮生长因子抗体,BOSTER公司;PVDF膜,PALL公司;SDS-PAGE凝胶、电泳液缓冲液、转移缓冲液、TBST、洗脱抗体缓冲液,深圳中洪博元生物技术有限公司;BCA 蛋白定量试剂盒,Pierce公司。
1.3.3 仪器 Brilliance 16螺旋CT机,荷兰Phillips公司; Micro-CT机,瑞士SCANCO Medical AG公司;蛋白垂直电泳仪、超高灵敏度化学发光成像系统,上海伯乐生命医学产品有限公司;恒温摇床,上海领成生物科技有限公司。
1.4 方法
1.4.1 造模方案 大鼠予以10 mL/kg氯胺酮及地西泮混合液腹腔注射麻醉,固定于动物实验台。采用双腋下切口入路,钝性分离肱骨周围神经,结扎动静脉后,在尽可能靠近肩关节处离断肱骨,并切断鼠尾,缝合时将断端皮肤埋入切口内,避免大鼠舔舐伤口[7]。手术结束后单笼喂养,24-48 h内密切观察有无渗出、出血等。采用专用的诱导侧凸鼠笼,高笼喂养,大鼠以悬空方式进食至少3个月。
1.4.2 X射线检查及不对称张力分布检测
(1)X射线检查:术后3个月,将大鼠固定于水平斜面40°的硬板,进行正位X射线摄片,参照脊柱侧凸研究协会指南的相关标准[8],以Cobb角>10°为诊断标准。由2位医师独立重复测量;
(2)不对称张力检测:对全脊柱进行CT扫描,利用Mimics软件重建脊柱三维模型,导入Abaqus后进行有限元分析,记录凹侧及凸侧的应力分布[9-10]。其中X轴为上向,Y轴为从右至左向,Z轴为前向。
1.4.3 椎体骺板相关蛋白表达 大鼠麻醉后处死,提取凹侧及凸侧椎体骺软骨,低温保存于盐水纱布中。检测时从骺软骨中萃取约50 μg蛋白样品后进行分级分离,将分离后的蛋白印迹转移至NC膜,室温下,缓冲盐水用0.1%Tween20及5%脱乳脂液阻断约1 h,将膜与抗体放置在4 ℃过夜。以β肌动蛋白(β-actin)为内参蛋白,将膜与第二抗体(1∶2 000)孵育1 h,采用ECL和Western-blot系统进行检测。
1.4.4 骨小梁结构检测 将样本按照生理方向摆放,用分辨率μCT进行扫描。采用Minmics系统,将2D图像信号源转换为3D图像。以脊柱中轴线为参照,分为凸侧及凹侧椎体,提取松质骨小梁进行映射。设置μCT扫描参数,计算以下数据:①骨体积分数:相对骨体积或骨体积分数;②骨小梁数目:骨组织内与非骨组织交点数量;③骨小梁厚度:骨小梁的平局厚度;④骨小梁分离:骨小梁之间髓腔的平均宽度;⑤结构模型指数:骨小梁板状与杆状的程度。
1.5 主要观察指标 术后3个月,行X射线检查;采用Mimics软件分析不对称张力分布。处死大鼠后,提取凹侧及凸侧椎体骺软骨,ECL和Western-blot系统检测聚集蛋白聚糖、Ⅱ型胶原蛋白、Sox9、血管内皮生长因子蛋白的表达;并采用μCT扫描检测骨小梁结构,计算骨体积分数、骨小梁数目、骨小梁厚度、骨小梁分离和结构模型指数。
1.6 统计学分析 所有数据均采用SPSS 20.0软件包进行统计。数据由2人重复录入、核查、纠错。计量资料采用x±s表示,均已验证呈正态分布,统计推断采用t 检验。检验水准α=0.05,P < 0.05认为差异有显著性意义。