经颈静脉移植神经干细胞治疗脑性瘫痪

doi:10.3969/j.issn.2095-4344.2016.14.017

摘要/Abstract

摘要：

文章快速阅读：

文题释义：

抬高身体摇摆实验：用于测量运动不对称，测量时首先用手提起大鼠的尾根部，大鼠头部悬垂距平面 5 cm左右，这时大鼠头部会向左侧或右侧旋转，向单侧旋转的角度大于10°时为计数标准，记录旋转的方向和角度，一次实验后让大鼠休息1 min，再进行下一次实验，重复实验20次，记录总的次数和方向。

尼氏体：为嗜碱性物质，又称嗜染质，光镜下呈斑块状或细粒状散在均匀分布。在一些大型的运动神经元，尼氏体大而多，宛如虎皮花纹，又称“虎斑”。电镜下，尼氏体由大量平行排列的粗面内质网和其间的游离核糖体组成。尼氏体是神经元胞体细胞质的特征性结构之一，神经元胞质另外一特征性结构为神经原纤维。

背景：移植入宿主体内的神经干细胞能够存活、增殖、分化为神经元和/或胶质细胞，从而促进宿主缺失功能的部分恢复。

目的：观察神经干细胞移植对脑性瘫痪大鼠的治疗作用。

方法：将24只大鼠随机分为3组：对照组，模型组和移植组，后两组脑性瘫痪模型建立后1周，移植组大鼠经颈静脉注射1 mL神经干细胞悬液(1×10⁵个)，对照组和模型组大鼠经颈静脉注射1 mL生理盐水。移植后3周，测量各组大鼠的趾距、步长和抬高身体摇摆情况，并观察各组大鼠大脑病理组织学变化。

结果与结论：①模型组大鼠的左前掌趾距和步长明显低于右前掌趾距和步长，差异有显著性意义(P < 0.05)，移植组和对照组大鼠的趾距、步长均明显高于模型组，差异有显著性意义(P < 0.05)；②模型组抬高身体为不对称摆动，对照组和移植组大鼠为对称摆动；③移植组和对照组大鼠的右侧大脑半球面积/左侧大脑半球面积比值明显高于模型组，差异有显著性意义(P < 0.05)；④结果表明，经颈静脉移植神经干细胞可明显改善脑性瘫痪大鼠的病理损伤，并可恢复运动神经行为学功能。
中国组织工程研究杂志出版内容重点：干细胞；骨髓干细胞；造血干细胞；脂肪干细胞；肿瘤干细胞；胚胎干细胞；脐带脐血干细胞；干细胞诱导；干细胞分化；组织工程
ORCID: 0000-0001-5791-0214(娄元俊)

关键词: 干细胞, 移植, 神经干细胞, 脑瘫, 大鼠, 细胞移植, 趾距, 步长

Abstract:

BACKGROUND: Transplanted neural stem cells can survive, proliferate and differentiate into neurons and/or glial cells in the host, thereby promoting partial function recovery in the host.

OBJECTIVE: To study the therapeutic effects of neural stem cell transplantation on cerebral palsy rats.

METHODS: Twenty-four rats were randomly divided into three groups: control group, model group and transplantation group. Animal models of cerebral palsy were made in the latter two groups. One week after modeling, rats in the transplantation group were injected 1 mL stem cell suspension (1×10⁵) via the jugular vein, and rats in the control and model group were given the same volume of normal saline. Toe distance, step length and elevated body swing test in rats were detected, and histopathological changes in the rat brain were observed 3 weeks after transplantation.

RESULTS AND CONCLUSION: In the model group, the toe distance and step length of the front left palm were significantly lower than those of the front right palm (P < 0.05). Compared with the model group, the toe distance and step length in the transplantation and control groups were significantly increased (P < 0.05). In the elevated body swing test, rats in the model group presented with asymmetric swing of the body, but rats in the other two groups exhibited symmetric swing of the body (P < 0.05). Additionally, the ratio of right to left hemispheric areas was significantly higher in the transplantation and control groups compared with the model group (P < 0.05). In conclusion, neural stem cell transplantation via the jugular vein can improve brain function and restore motor function in rats with cerebral palsy.
中国组织工程研究杂志出版内容重点：干细胞；骨髓干细胞；造血干细胞；脂肪干细胞；肿瘤干细胞；胚胎干细胞；脐带脐血干细胞；干细胞诱导；干细胞分化；组织工程

Key words: Neural Stem Cells, Cerebral Palsy, Cell Transplantation, Tissue Engineering

娄元俊，刘阳，单海军，曹彩红，介小素. 经颈静脉移植神经干细胞治疗脑性瘫痪[J]. 中国组织工程研究, 2016, 20(14): 2092-2097.

Lou Yuan-jun, Liu Yang, Shan Hai-jun, Cao Cai-hong, Jie Xiao-su. Neural stem cell transplantation for treatment of cerebral palsy[J]. Chinese Journal of Tissue Engineering Research, 2016, 20(14): 2092-2097.

图/表（结果） 2

2.1 神经干细胞的生长形态原代培养第1天，部分细胞贴壁，呈圆形，折光性好，培养第3天，细胞不断增殖，聚集成神经球，培养第7天，神经球变大，折光性差，中心变暗，可以进行传代培养。传代培养第1天，部分细胞出现分裂，细胞增殖迅速，培养到第7天，形成含几百个细胞的大神经球(图1A)。传代培养第3代时，可见大量神经球，Nestin抗原染色呈阳性(图1B)。

2.2 实验动物数量分析 24只Wistar大鼠均进入结果分析。

2.3 各组大鼠的趾距模型组的左前掌平均趾距宽度和右前掌平均趾距宽度分别为(0.91±0.01) cm和(1.03± 0.03) cm，两者比较差异有显著性意义(P < 0.05)，对照组的左前掌平均趾距宽度和右前掌平均趾距宽度分别为(1.12±0.02) cm和(1.13±0.03) cm，两者比较差异无显著性意义(P > 0.05)；移植组的左前掌平均趾距宽度和右前掌平均趾距宽度分别为(1.07±0.02) cm和(1.09± 0.03) cm，两者比较差异无显著性意义(P > 0.05)；模型组与对照组比较差异有显著性意义(P < 0.05)；移植组与模型组比较差异也有显著性意义(P < 0.05)。

2.4 各组大鼠的步长模型组的左前掌平均步长和右前掌平均步长分别为(5.63±0.11) cm和(6.59±0.23) cm，两者比较差异有显著性意义(P < 0.05)，对照组的左前掌平均步长和右前掌平均步长分别为(6.73±0.18) cm和(6.70±0.13) cm，两者比较差异无显著性意义(P > 0.05)；移植组的左前掌平均步长和右前掌平均步长分别为(6.52±0.12) cm和(6.57±0.13) cm，两者比较差异无显著性意义(P > 0.05)；模型组与对照组比较差异有显著性意义(P < 0.05)；移植组与模型组比较差异也有显著性意义(P < 0.05)。

2.5 各组大鼠的抬高身体摇摆实验结果模型组、对照组和移植组的向左摆动频率分别为(82.33±5.64)%、(50.52±3.20)%和(58.21±1.54)%，模型组为不对称摆动，对照组为对称摆动，移植组为对称摆动，模型组与对照组比较差异有显著性意义(P < 0.05)；移植组与模型组比较差异有显著性意义(P < 0.05)。

2.6 各组大鼠的大脑解剖学变化模型组大鼠的右侧大脑半球脑实质减少，液化呈透明状，并有空洞形成，左侧大脑半球没有明显变化；对照组大鼠双侧半球正常，无液化现象；移植组大鼠右侧大脑半球体积稍有缩小，未见液化现象，左侧大脑半球没有明显变化。

2.7 各组大鼠的双侧大脑半球面积比较 Nissl染色可见对照组神经细胞Nissl小体数量多，模型组部分神经细胞Nissl小体溶解消失，移植组Nissl小体数量介于二者之间(图2)。模型组、对照组和移植组的右侧大脑半球面积/左侧大脑半球面积比值分别为(31.94±2.43)%、(100.32± 0.48)%和(81.23±1.52)%，模型组和对照组比较差异有显著性意义(P < 0.05)，移植组和模型组比较差异有显著性意义(P < 0.05)。

参考文献

[1] 吴云.小儿脑性瘫痪的发病机制及诊治进展[J].安徽医学, 2011,32(6):859-862.

[2] 罗华英.头颅CT在小儿脑瘫诊断中的作用[J].江西医药, 2009,44(3):271-272.

[3] 胡春维,张斌,秋艳萍,等.脑性瘫痪198例临床分析[J].陕西医学杂志,2010,39(7):887-888.

[4] 殷方明,史敏康,史丽峰.神经节苷脂治疗新生儿中重度缺氧缺血性脑病疗效观察[J].现代中西医结合杂志.2010, 19(14):1739-1740.

[5] 宋令瑄.神经节苷酯辅助治疗小儿脑瘫的临床研究[J].中国实用神经疾病杂志,2009,12(17):63-64.

[6] 怀智勇.小儿痉挛型脑瘫的中西医治疗概况[J].按摩与康复医学:下旬刊,2012,3(1):47-48.

[7] 王艳,唐强,李晓艳,等.小儿脑瘫的康复研究进展[J].中国康复,2010,25(6):470-472.

[8] 汪美君,兰金山,李胜.播放音乐对局部麻醉鼻内镜手术患者焦虑及疼痛的影响[J].护理与康复,2011,10(10):844- 845.

[9] 张超,芮芳,唐久来,等.小儿脑性瘫痪影响因素与临床类型的关系[J].安徽医学,2010,31(7):719-722.

[10] 张健,赵澎.小儿脑瘫的中医研究近况[J].医学综述,2010, 16(7):1092-1095.

[11] 李晓捷.关注小儿脑性瘫痪中西医康复疗法的实践与研究[J]. 中国中西医结合儿科学,2010,2(1):1.

[12] Zheng XR, Zhang SS, Yin F, et al. Neuroprotection of VEGF-expression neural stem cells in neonatal cerebral palsy rats. Behav Brain Res. 2012;230(1): 108-115.

[13] Azari H, Rahman M, Sharififar S, et al. Isolation and expansion of the adult mouse neural stem cells using the neurosphere assay. J Vis Exp. 2010;(45). pii: 2393.

[14] Deleyrolle LP, Reynolds BA. Isolation, expansion, and differentiation of adult Mammalian neural stem and progenitor cells using the neurosphere assay. Methods Mol Biol. 2009;549:91-101.

[15] Azari H, Osborne GW, Yasuda T, et al. Purification of immature neuronal cells from neural stem cell progeny. PLoS One. 2011;6(6):e20941.

[16] Louis SA, Mak CK, Reynolds BA. Methods to culture, differentiate, and characterize neural stem cells from the adult and embryonic mouse central nervous system. Methods Mol Biol. 2013;946:479-506.

[17] Xu N, Papagiannakopoulos T, Pan G, et al. MicroRNA-145 regulates OCT4, SOX2, and KLF4 and represses pluripotency in human embryonic stem cells. Cell. 2009;137(4):647-658.

[18] Yue F, Chen B, Wu D, et al. Biological properties of neural progenitor cells isolated from the hippocampus of adult cynomolgus monkeys.Chin Med J (Engl). 2006;119(2):110-116.

[19] Fansa H, Keilhoff G. Comparison of different biogenic matrices seeded with cultured Schwann cells for bridging peripheral nerve defects. Neurol Res. 2004; 26(2):167-173.

[20] Rosenblum S, Wang N, Smith TN, et al. Timing of intra-arterial neural stem cell transplantation after hypoxia-ischemia influences cell engraftment, survival, and differentiation. Stroke. 2012;43(6): 1624-1631.

[21] Daadi MM, Davis AS, Arac A, et al. Human neural stem cell grafts modify microglial response and enhance axonal sprouting in neonatal hypoxic-ischemic brain injury. Stroke. 2010;41(3):516-523.

[22] Lee JS, Hong JM, Moon GJ, et al. A long-term follow-up study of intravenous autologous mesenchymal stem cell transplantation in patients with ischemic stroke. Stem Cells. 2010;28(6):1099-1106.

[23] Tan JL, Zheng XR, Zhang SS, et al.Response of the sensorimotor cortex of cerebral palsy rats receiving transplantation of vascular endothelial growth factor 165-transfected neural stem cells. Neural Regen Res. 2014;9 (19): 1763-1769.

[24] Amit M, Chebath J, Margulets V, et al. Suspension culture of undifferentiated human embryonic and induced pluripotent stem cells. Stem Cell Rev. 2010; 6(2):248-259.

[25] van Velthoven CT, Kavelaars A, van Bel F, et al. Nasal administration of stem cells: a promising novel route to treat neonatal ischemic brain damage. Pediatr Res. 2010;68(5):419-422.

[26] 栾佐,屈素清,刘卫鹏,等.人神经干细胞移植治疗重度视觉障碍脑瘫患儿的临床观察[J].中国康复理论与实践,2007, 13(12): 1103-1105.

[27] Wei L, Fraser JL, Lu ZY, et al. Transplantation of hypoxia preconditioned bone marrow mesenchymal stem cells enhances angiogenesis and neurogenesis after cerebral ischemia in rats. Neurobiol Dis. 2012; 46(3):635-645.

[28] Li M, Yu A, Zhang F, et al. Treatment of one case of cerebral palsy combined with posterior visual pathway injury using autologous bone marrow mesenchymal stem cells.J Transl Med. 2012;10:100.

[29] Lu D, Chen B, Liang Z, et al. Comparison of bone marrow mesenchymal stem cells with bone marrow-derived mononuclear cells for treatment of diabetic critical limb ischemia and foot ulcer: a double-blind, randomized, controlled trial. Diabetes Res Clin Pract. 2011;92(1):26-36.

[30] 杜侃,栾佐,屈素清,等.骨髓间充质干细胞移植治疗小儿重度脑性瘫痪的疗效观察[J].临床儿科杂志,2011,29(1): 55-58.

[31] Sun J, Allison J, McLaughlin C, et al. Differences in quality between privately and publicly banked umbilical cord blood units: a pilot study of autologous cord blood infusion in children with acquired neurologic disorders. Transfusion. 2010;50(9):1980-1987.

[32] Lee YH, Choi KV, Moon JH, et al. Safety and feasibility of countering neurological impairment by intravenous administration of autologous cord blood in cerebral palsy. J Transl Med. 2012;10:58.

[33] 杨华强,张荣环,杜玲,等.脐带间充质干细胞移植对脑瘫患儿运动功能的影响[J].现代生物医学进展,2012,12(2): 250-252.

[34] Jensen A, Hamelmann E. First autologous cell therapy of cerebral palsy caused by hypoxic-ischemic brain damage in a child after cardiac arrest-individual treatment with cord blood. Case Rep Transplant. 2013; 2013:951827.

[35] 吴景文,贾丹兵,曲超法,等.干细胞移植治疗小儿脑瘫的临床疗效:40例报告[J].中华神经外科疾病研究杂志,2011, 10(5):424-427.

[36] 栾佐.新生动物及其缺血性脑损伤神经干细胞移植的研究现状[J].中华儿科杂志,2004,42(4):305-308.

[37] 杨万章,吴芳,张敏,等.脐血源神经干细胞移植治疗神经系统疾病临床总结和分析[J].中西医结合心脑血管病杂志, 2009,7(3):287-290.

[38] Nakamura M, Toyama Y, Okano H.Transplantation of neural stem cells for spinal cord injury.Rinsho Shinkeigaku. 2005;45(11):874-876.

引言

材料方法

1.1 设计随机对照动物实验。

1.2 时间及地点实验于2015年3至10月在河南中医学院完成。

1.3 材料

1.3.1 实验动物清洁级孕15 d、健康雄性Wistar大鼠5只，用于分离培养神经干细胞；清洁级7 d龄、健康雄性Wistar大鼠24只，用于动物实验，均购自河南省实验动物中心。实验前大鼠饲养于实验室大鼠专用鼠笼，自由进食，自由活动。实验大鼠符合卫生部一级动物标准，并经过动物伦理学委员会批准。

1.3.2 主要试剂胎牛血清(天津四季生物研究所)；多聚甲醛、PBS(北京中山生物技术有限公司)；青霉素、链霉素(沈阳东药集团公司)；DMEM培养基、Neurobasal培养基(美国Gibcero公司)；表皮生长因子、碱性成纤维生长因子、B27白细胞抗原、牛血清白蛋白(PeproTech公司)；兔抗鼠Cy3抗体(Jackson Immunological Research)；兔抗鼠CNP多克隆抗体、兔抗大鼠GFAP多克隆抗体、兔抗鼠NSE多克隆抗体(Serotec公司)；Triton X-100(Farco公司)；Lentivirus/GFP(上海吉凯基因技术有限公司)；DAB显色试剂盒(北京中杉金桥生物技术有限公司)。

1.3.3 主要仪器超净工作台(上海博讯实业公司)；血球计数板(浙江玉环光学仪器厂)；pH酸度仪(上海伟业仪器厂)；实验动物手术包(上海市医疗器械有限公司)；流式细胞仪(美国Beckman Coulte公司)；二氧化碳培养箱(美国Thermo公司)；电热恒温水槽(晋州市康宏线缆仪器设备有限公司)；显微数码照相系统(日本Olympus公司)；细胞计数板(上海玉光光学仪器厂)；EP管、96孔细胞培养板、25 cm²、75 cm²细胞培养瓶(广州赛业生物技术有限公司)；PHS-3E型精密酸度计(上海雷磁分析仪器公司)；生物倒置显微镜、石蜡切片机(德国Leica公司)。

1.4 实验方法

1.4.1 大鼠神经干细胞的分离培养将孕15 d大鼠脱颈处死，取出胎鼠，获取脑组织，分离表面脑膜和血管，剔除结缔组织，用D-Hank’s液清洗，剪成小块，置入胰蛋白酶溶液中进行消化，胎牛血清终止消化，吹打成细胞悬液，滤网过滤收集细胞悬液，离心后弃去上清液，加入无血清DMEM培养基，吹打成均匀细胞悬液，锥虫蓝染色，调整细胞浓度为1×10⁸ L^-¹，接种到25 mL培养瓶中，48 h进行首次换液，次日进行半量换液进行原代培养。原代培养7 d后，细胞大量增殖形成神经球，开始进行传代培养，将细胞用EDTA+胰酶消化液进行消化，胎牛血清终止消化，离心弃去上清液，加入D-Hank’s液制成细胞悬液，离心弃去上清液，加入干细胞培养基，锥虫蓝染色，调整细胞浓度为1×10⁸ L^-¹，接种到细胞培养瓶中进行传代培养，每天在显微镜下观察细胞的生长情况。

1.4.2 神经干细胞的鉴定将生长良好的第3代细胞经PBS洗涤，多聚甲醛固定，PBS洗涤，封闭液封闭，Nestin一抗培养，PBS洗涤，二抗培养，PBS洗涤等步骤，显微镜下观察拍照。

1.4.3 脑瘫模型的建立将24只大鼠随机分为3组：对照组，模型组和移植组，每组8只。模型组和移植组大鼠给予异氟烷麻醉成功后，固定于手术台上，消毒，颈部正中切开皮肤，分离右颈总动脉，双重结扎剪断血管，缝合切口。手术后休息2 h放入密闭缺氧箱中3 h，缺氧箱中通入体积分数为92%N₂和体积分数为8%O₂混合气体。对照组不予处理。

1.4.4 神经干细胞移植脑瘫模型建立后1周进行神经干细胞移植，移植组大鼠经颈静脉注射1 mL神经干细胞悬液(1×10⁵个)，对照组和模型组大鼠经颈静脉注射1 mL生理盐水。

1.4.5 各组大鼠的趾距分析建模3周后，将大鼠左前掌和右前掌分别涂上红色和蓝色印油，让其在白纸上直线行走，共重复3次，测量大鼠左前掌印与右前掌印第一和第四趾间宽度。

1.4.6 各组大鼠的步长分析建模3周后，让大鼠在白纸上行走，步骤同趾距测量，测量相邻左前掌与相邻右前掌之间距离。

1.4.7 各组大鼠抬高身体摇摆实验(EBST) 建模3周后，捏住大鼠尾巴提起大鼠，当大鼠头部偏离垂直轴右侧超过10°记为向右摆动，向左偏离超过10°时记为向左摆动，将大鼠恢复垂直位置后进行下一次摆动，每只大鼠进行25次摆动，计算向左向右摆动频率，向左或向右摆动频率超过70%时记为不对称摆动。

1.4.8 各组大鼠大脑病理学分析建模3周后，水合氯醛麻醉大鼠，将大鼠固定到手术台上，暴露心脏，剪开右心耳，从左心室插入输液针头输入生理盐水250 mL冲净血液，再输入250 mL多聚甲醛溶液进行固定，断头取脑，放入40 g/L多聚甲醛固定过夜，蔗糖溶液脱水，OCT冰冻切片包埋剂包埋，切成5 μm厚的切片。Nissl染色：将切片放入丙酮溶液固定，蒸馏水洗涤，放入甲苯胺蓝溶液中40 min，室温下放置1 min，蒸馏水洗涤，乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固，显微镜下观察拍照。Image Pro-Plu软件得出每张切片的右脑和左脑半球面积，计算右脑半球面积和左脑半球面积比值。

1.5 主要观察指标 ①各组大鼠的趾距、步长、抬高身体向两侧摆动频率。②各组大鼠大脑病理学分析。

1.6 统计学分析所有数据输入SPSS 18.0软件进行处理，计量资料用x(_)±s表示，采用单因素方差分析，组间比较采用t 检验，P < 0.05为差异有显著性意义。

讨论

随着医疗水平的发展，新生儿死亡率下降，存活率提高，一部分脑损伤患儿能够存活下来，使脑瘫的发生率有逐年上升趋势^[1]。脑瘫常见的原因有新生儿窒息、新生儿缺血缺氧性脑病、早产、胆红素性脑病以及低出生体质量等^[2-3]。药物治疗方法主要促进脑循环和脑代谢，促进突触形成和神经细胞生长，降低肌张力^[4-5]；手术方法有周围神经选择性部分切断术、骨科矫形手术、腰骸段选择性脊神经后根部分切断术以及经皮射频技术选择性破坏脊髓背根术等^[6]，均取得一定疗效；现代康复治疗的主要方法有物理因子疗法、生物反馈疗法、高压氧治疗、电刺激疗法、音乐治疗、矫形器治疗、Vojtal法、Bobath法、Rood法以及PNF法等^[7-9]，在早期脑瘫患儿的治疗中均起到一定效果；中医治疗包括中药、针灸、拔罐、穴位注射、推拿、温热、穴位埋线等^[10-11]，均取得显著效果；近年来干细胞移植治疗在国内外引起重视，成为一种新的治疗脑瘫的方法。

神经干细胞具有自我更新和多向分化能力，可以分化为中枢神经系统的各种细胞^[12-13]，促进损伤的脑细胞再生^[14]，维持内环境稳定，在干细胞替代治疗方面具有应用价值，作为可再生细胞来源是比较有前景的^[15]。神经干细胞主要存在于脑室下区和海马齿状回颗粒下区^[16]，具有再生潜能^[17]，能分化为神经胶质细胞和神经元^[18]，但新生细胞的存活率低，使其修复作用受到限制^[19]。神经干细胞治疗脑瘫的机制可能为细胞迁移聚集到大脑损伤部分^[20-21]，分泌多种神经营养因子促进神经细胞的修复和再生^[22-23]，建立神经环路，增加神经突触联系修复神经损伤。目前治疗脑瘫的干细胞主要有胚胎干细胞、骨髓干细胞和脐血干细胞。自从人胚胎干细胞培养成功后^[24]，大量研究证实胚胎来源神经干细胞治疗脑瘫安全有效^[25-26]；骨髓干细胞和脐血干细胞移植治疗脑瘫也取得了一定效果^[27-34]。有研究发现基因转染神经干细胞在脑瘫的治疗中也有一定效果^[35-36]。杨万章等^[37]研究发现神经干细胞治疗脑瘫后肌张力和痉挛程度有所下降，Nakamura等^[38]研究发现神经干细胞移植治疗神经损伤猕猴可以促进肢体运动功能的恢复。为此，实验建立脑瘫大鼠动物模型，进行神经干细胞移植治疗，结果发现：模型组大鼠的左前掌平均趾距宽度明显小于右前掌平均趾距宽度，对照组和移植组大鼠的左、右前掌平均趾距宽度明显大于模型组，差异有显著性意义(P < 0.05)；模型组的左前掌平均步长明显小于右前掌平均步长，对照组和移植组的左、右前掌平均步长与模型组比较差异有显著性意义；模型组的抬高身体为不对称摆动，对照组和移植组为对称摆动；对照组和移植组的右侧大脑半球面积/左侧大脑半球面积比值明显高于模型组(P < 0.05)。由此可见，经颈静脉移植神经干细胞可明显改善脑瘫大鼠的病理损伤，并可恢复运动神经行为学功能。
中国组织工程研究杂志出版内容重点：干细胞；骨髓干细胞；造血干细胞；脂肪干细胞；肿瘤干细胞；胚胎干细胞；脐带脐血干细胞；干细胞诱导；干细胞分化；组织工程