1.1 造模动物及材料
1.1.1 中药银杏平颤方 汤药内含熟地、枸杞、桑寄生、天麻、钩藤、丹参、白芍、生南星,按既定工艺煎煮成汤药,由海南医学院药物化学教研室制剂室制备。银杏平颤方全方动物用药量根据成人用药的5倍量计算,取全方用乙醇提取,得浸膏,含有生药的最终浓度为 0.60 g /mL存于4 ℃冰箱内备用,灌胃时溶于蒸馏水中。
1.1.2 实验动物 6.0-7.0周龄C57BL小鼠36只,雌性,体质量(20±2) g,购于北京维通利华公司实验动物中心,许可证号:SCXK(京)2011-0011。
1.1.3 实验细胞及试剂 SH-SY5Y细胞(美国ATCC);胎牛血清、Trypin-EDTA 及DMEM培养液(美国Gibco 公司);MTT、二甲基亚砜(国药集团化学试剂有限公司);细胞周期检测试剂盒(中国上海贝博生物有限公司);AnnexinⅤ-PI 双染试剂盒(碧波公司);丙烯酰胺、甲叉双丙烯酰胺、Tris 碱、四甲基乙二胺(tetramethylethylene diamine,TEMED)、十二烷基硫酸钠(sodiumodecyl sulfate,SDS)、过硫酸铵(tetramethyl ethyleneiamine,APS)、吐温-20(Tween- 20)(上海生工生物工程公司);显影液west Femto 及ECL west Pico 显影液(美国Pierce 公司);TRIzol 试剂(美国Invitrogen 公司);反转录试剂盒(美国Fermentas 公司);实时PCR试剂盒(日本Takara公司);酪氨酸羟化酶(TH-16)抗体 (Sigma公司);兔抗Cleaved PARP (Cell signal公司);兔抗人PTEN单克隆抗体(美国Cell Signaling公司);鼠抗人GAPDH(上海Abmart 公司)、兔二抗、鼠二抗均(美国Santa Cruz公司)。
1.1.4 仪器 化学发光仪(美国GE Healthcare,型号LAS4000);垂直电泳仪(美国Bio-Rad公司,型号165-3301);荧光定量PCR仪(美国Stratagene公司,型号Mx3000P);CO2细胞培养箱(美国Thermo公司,型号Forma 3111)。
1.2 动物体内实验
1.2.1 帕金森病鼠模型建立 选用C57BL雄性小鼠腹腔注射用生理盐水配制的0.3%MPTP,25 mg/(kg·d),连续6周。
1.2.2 造模成功的检测标准 经过药物处理的小鼠,在行为学上出现向健侧旋转的行为,并且随着时间的推移,出现旋转的小鼠数量明显增多,旋转速度加快,6周后,经诱导出现旋转的小鼠数量和旋转速度相对稳定,其中20只恒定向健侧旋转,视为成功建立帕金森病小鼠模型。
1.2.3 动物分组及处理 动物随机分成3组,每组10只,除正常组外,其他各组每次腹腔注射M PTP前30 min进行灌胃处理。①正常组不处理;②模型组灌胃生理盐水每只25 g/(kg·d);③银杏平颤治疗组(简称治疗组)灌胃中药每只25 g/(kg·d);动物分别在造模开始后的第15天和第30天取脑进行检查。
1.2.4 取材及材料处理 造模期满后用体积分数 10%的水合氯醛腹腔麻醉,打开胸腔后经升主动脉尽量快速推注生理盐水25 mL,然后缓慢推注体积分数4%甲醛固定。取脑,置于体积分数4%甲醛固定固定过夜。脑组织经常规步骤处理后,石蜡包埋,切片、片厚4 μm,常温保存备用。
1.2.5 免疫组织化学方法 采用常规免疫组织化学 ABC法显示小鼠中脑黑质酪氨酸羟化酶的表达。阴性对照切片用PBS代替一抗,其他处理相同。光镜观察切片。
1.3 体外细胞实验
1.3.1 细胞培养 将神经母细胞瘤衍生细胞株SH-SY5Y用含有体积分数15%胎牛血清的DMEM 培养基培养,置于37 ℃,体积分数5%CO2的细胞培养箱中常规培养。用含0.02%EDTA的0.25%胰酶消化液消化细胞,并进行传代,传至4,5代,选取生长状态良好,增殖旺盛的细胞用于试验研究。
1.3.2 药物处理 银杏平颤方溶于二甲基亚砜,储存浓度为0.8 mmol/L MPP+溶于无菌ddH2O,储存浓度为0.8 mol/L,避光-20 ℃冰箱储存。使用时按所需浓度溶于培养基中,用于细胞处理。
1.3.3 MTT法检测人SH-SY5Y的增殖 取生长状况良好的对数期SH-SY5Y细胞进行MPP+诱导培养后进行消化,轻柔吹匀,调整为浓度为(3-3.5)×107 L-1的单细胞悬液,接种于96孔板中,每孔200 μL,每组每个时间点设置3个重复孔,培养6 h后,实验组加入含有银杏平颤方成分的培基,并在0 h的实验组和对照组每孔中加入20 μL的MTT。反应4 h后,弃液,加入150 μL二甲基亚砜,置于摇床上匀速摇30 min,带结晶完全溶解后,用空白调零,利用自动酶标仪测定490 nm下各孔的光吸收值,一每组3个复孔的平均值作为各组的实验值,重复3次实验,实验组的抑制率=1-A实验组/A对照组×100%。
1.3.4 AnnexinⅤ-PI双标记流式细胞术检测细胞凋亡选取生长状态好、处于对数生长期的SH-SY5Y细胞进行MPP+诱导培养后,以浓度为2×108 L-1接种于6孔板内,每孔加入2 mL培基。放置于37 ℃、体积分数5%CO2培养箱中培养24 h。换成含有1%血清的DMEM,37 ℃继续孵育18 h,使细胞进入静止期。丢弃上清,用PBS清洗3次,实验分组:空白细胞对照组(1%血清的DMEM培基2 mL)、助溶剂二甲基亚砜对照组(1%血清的DMEM培基2 mL,二甲基亚砜终浓度为0.8 μmol/L)和银杏平颤方实验组(1%血清的DMEM培基2 mL,银杏平颤方终浓度为0.8 μmol/L),培养24 h后,将细胞消化下来,离心,收集细胞。按照说明书对细胞进行染色:加入550 μL的结合缓冲液重新悬浮细胞,然后向细胞悬液中加入6 μL Annexin V/FITC 混匀后,加入6 μL Propidium Iodide,轻柔混匀。避光室温静置20 min,利用流式细胞仪上机分析。CELL Quest 软件自动获取每样品1×104个细胞。流式细胞仪定量分析,计算Annexin V-FITC及PI双标阳性细胞含量的百分比。
1.3.5 PARP PTEN mRNA表达的检测 采用实时PCR检测加入银杏平颤方后,SH-SY5Y细胞的PARP PTEN mRNA的相对表达量。首先用TRIzol提取细胞总RNA,将总RNA反转录合成cDNA。反应条件:42 ℃ 60 min,70 ℃ 10 min。以反转录反应产物cDNA为模板,PARP forward,AGG TTC TGG GAC AGC AAC TGT T,reverse,AGCT GAT GCA TGT GCC TGA AG;PTEN:forward,GAG ACA CAA ATA TGA GCA CAC AGG TAA,reverse,ATG ATG CTT GTG TTT AAA TGC CTT T。实时PCR反应条件如下:95 ℃ 30 s, 95 ℃ 15 s,60 ℃ 30 s,共39个循环。溶解曲线条件:95℃ 15 s,60 ℃ 60 s,95 ℃ 15 s。根据反应结束后的Ct值(Ct值即为每个反应管内的荧光信号达到设定的域值时所对应的循环数),通过2-??Ct法计算样品中多种mRNA 的相对表达量所得产物经1%琼脂糖凝胶电泳验证[6]。
1.3.6 Western blot分析 将3组细胞:细胞对照组、二甲基亚砜助溶剂对照组和银杏平颤方组培养至对数生长期,细胞按7×105/孔的数量加入6孔板中,培养24 h后,用预冷的PBS漂洗2次,立即以细胞刮刀收集细胞, 1 900 r/min 离心10 min,弃上清。用蛋白裂解液提取总蛋白,测定蛋白浓度,然后加入5×loading在100 ℃沸水浴中煮7 min。等质量蛋白进凝胶电泳,用湿式转膜仪将凝胶中的蛋白转移到pvdf膜上,5%的脱脂牛奶封闭60 min,将pvdf膜用TBST洗涤2次,每次3 min。分别加入兔抗PARP多抗体,PTEN抗体,内参照用鼠抗人GAPDH,阴性对照用等量PBS代替一抗,4 ℃孵育过夜后弃去一抗,用TBST洗涤3次×15 min。再分别加入辣根酶标记的兔抗羊二抗或鼠抗兔二抗,37 ℃孵育1 h。弃酶标抗体,然后用TBST洗涤3次,每次15 min。化学发光仪使用ECL显影液进行显影。以GAPDH作为内参。
1.4 主要观察指标 ①银杏平颤方对帕金森病鼠中脑黑质致密部酪氨酸羟化酶阳性神经元丢失的影响;②银杏平颤方对MPP+诱导培养后的SH-SY5Y细胞增殖和凋亡的影响;③银杏平颤方对MPP+诱导培养后的SH-SY5Y细胞PARP及PTEN mRNA和蛋白表达的影响。
1.5 统计学分析 采用SPSS18.0统计软件进行方差分析和t 检验,将P < 0.05判定为差异有显著性意义。
中国组织工程研究杂志出版内容重点:肾移植;肝移植;移植;心脏移植;组织移植;皮肤移植;皮瓣移植;血管移植;器官移植;组织工程