1.1 设计 细胞学体外对比观察,随机对照动物实验。
1.2 时间及地点 实验于2012年4月至2014年12月在河北医科大学动物实验中心完成。
1.3 材料
1.3.1 实验动物 1-3 d龄的SD乳鼠3只,8周龄SD大鼠45只,雌雄不限,体质量250-300 g,购自河北医科大学动物实验中心,动物质量合格证号:SCXK(冀)20050001。
1.3.2 脐血标本和主要试剂 脐血由唐山市开滦总医院提供;L-DMEM培养基(美国Hyclone公司);胎牛血清(上海拜力科技公司);胰蛋白酶(美国Santa Cruz公司);PBS粉剂(福州迈新);大鼠心肌细胞培养基(北京裕恒丰科技有限公司);兔抗鼠Bax抗体、兔抗鼠caspase-3抗体、β-actin兔抗鼠多克隆抗体和辣根酶标记山羊抗兔IgG抗体(美国SBI公司);Western blot蛋白检测试剂盒(美国Santa Cruz公司);BCA蛋白浓度测定试剂盒(Beyotime公司);TUNEL凋亡检测试剂盒(美国Invitrogen公司);细胞培养箱(美国Thermo Forma公司);SONOS7500惠普多普勒超声诊断仪(美国惠普公司);二氧化碳培养箱(美国Forma公司);倒置显微镜(TE300,日本Nikon公司)。
1.4 实验方法
1.4.1 脐血间充质干细胞的分离培养和鉴定 在无菌环境下获得脐血50-100 mL,20 U/mL肝素抗凝,4 ℃冰箱保存。标本在采集后12 h内进行分离,将脐血与Hank’s液以1∶1稀释,取无菌离心管数个加入密度为1.077 g/cm3的淋巴细胞分离液,稀释后的脐血以1∶2的比例加入,保持液面分界状态,以800×g离心20 min,小心吸取中间白膜层,用磷酸盐缓冲液冲洗2遍,以彻底弃去上清。分离单个核细胞后,以1×109 L-1细胞浓度接种于含体积分数为5%胎牛血清的DMEM/F12的培养瓶中培养,置于37 ℃、体积分数为5% CO2及饱和湿度孵育箱中,24 h后全量换液,以后每3 d换液1次。第1次传代后每3 d换液1次,逐日观察细胞的生长情况,选取生长优良的第3代细胞,用2.5 g/L胰蛋白酶消化后制成1.0×106的单细胞悬液,每管0.1 mL,加入荧光标记小鼠抗人抗体CD34-FITC、CD45-FITC、CD49-FITC、CD90-FITC、CD105-FITC及CD29-FITC各20 μL及相应对照标记,在室温下反应30 min,PBS洗涤1遍,1 000 r/min离心5 min,振荡混匀,上流式细胞仪检测表面标记。
1.4.2 SD乳鼠心肌细胞的分离、培养 将1-3 d龄的SD乳鼠用体积分数为5%乙醇浸泡消毒约5 min,置于无菌培养皿中,固定好乳鼠躯体,以充分暴露胸部,自胸骨下段1/3部位剪开胸腔,从根部剪断取出乳鼠心脏,置于含4 ℃ PBS平衡盐缓冲液的无菌培养皿中,在冰上进行操作,小心去除心房和大血管,剪取左室组织,用4 ℃ PBS平衡盐缓反复冲洗5遍,清除残留积血,采用眼科剪将心脏组织剪碎成约1 mm3大小的组织块。将心脏组织块转移到无菌锥形瓶中,弃掉PBS平衡盐缓冲液,加入0.25%胰蛋白酶和0.1%Ⅱ型胶原酶各5 mL的混合消化液,恒温晃动,消化15 min,弃去上清液,置于含体积分数为20%胎牛血清的DMEM培养基中培养48 h,用0.25%胰酶消化细胞,体积分数为20%胎牛血清终止消化,消化3次,每次15 min。收集每次消化的上清液得到原代心肌细胞,当细胞达80%融合时传代,按1︰3进行传代。取第3代细胞,消化洗涤后送流式细胞仪检测。
1.4.3 体外实验及TUNEL染色 取第3代心肌细胞1.0×106加入终质量浓度为1 mg/L的阿霉素作用4 h建立阿霉素损伤心肌细胞模型。取第3代心肌细胞1.0×106不做任何处理作为对照组,阿霉素损伤心肌细胞作为损伤组,阿霉素损伤心肌细胞(1.0×106)与脐血间充质干细胞共培养(1.0×106)作为实验组。3组培养48 h后行TUNEL染色评估心肌细胞凋亡情况。收集各组细胞行细胞爬片,吸弃培养液,自然晾干,40 g/L多聚甲醛溶液固定,新鲜配制体积分数为3% H2O2室温处理,0.1% TritonX-100(溶于0.1%枸橼酸钠溶液)打孔,按TUNEL试剂盒说明操作,DAB显色,苏木精轻度复染,梯度乙醇脱水,二甲苯透明,中性树胶封固,显微镜观察。每张切片观察3个视野,每个视野连续数300个细胞,计数凋亡细胞百分比即为凋亡指数。
凋亡指数(%)=凋亡细胞数/总细胞数×100%
1.4.4 动物模型建立及分组 8周龄SD大鼠45只,随机分为3组,每组15只。正常对照组不做处理,阿霉素组腹腔注射阿霉素制备心肌梗死模型,每次5 mg/kg (0.6 g/L),隔日1次,共21 d。脐血间充质干细胞移植组按上述方法造模后,尾静脉移植脐血间充质干细胞悬液1 mL(1×106个),1次/d,连续3 d。
1.4.5 Powerlab评估心功能 移植后2周,经颈动脉插管将Millar测压导管置入左心室,远端接上换能器,Powerlab多功能生理仪监测左心室血流动力学指标,包括左心室收缩压、左心室舒张末压,左室压上升及下降最大速率,取平均值,应用Powerlab系统自带软件分析统计数据。
1.4.6 Western Blot方法检测凋亡相关蛋白Bax、caspase-3的表达水平 移植后2周,取各组大鼠心肌组织100 mg加入1 mL蛋白裂解液,提取蛋白,Bradford法测定蛋白浓度。将提取的总蛋白进行SDS-PAGE分离,取40 μg蛋白样品加上样缓冲液煮沸变性后,配制5 mL 12%分离胶溶液,灌注于两玻璃板间,小心覆盖一层无水乙醇,室温下放置约30 min,使胶充分凝固。将未聚合的聚丙稀酰胺除去,并转移至硝酸纤维素膜,用封闭液室温封闭2 h,分别加入兔抗鼠Bax抗体1∶800,或兔抗鼠caspase-3抗体1∶800,37 ℃摇床孵育2 h,TBST洗膜5 min×4次,山羊抗兔抗体1∶700,37 ℃摇床孵育1.5 h,TBST洗膜5 min×4次,二甲基联苯胺显色,重复3次,Quantity one图像分析,以目的条带灰度值/β-actin灰度值表示目的蛋白表达。
1.4.7 组织学观察大鼠心肌病理变化及梗死面积 移植后2周,SD大鼠腹腔麻醉,开胸取出心脏,剪除左右心房、大血管及附着的结缔组织,于冠状位切取厚度为2.0- 3.0 mm的左室切面,PBS平衡盐缓冲液反复漂洗5次,去除残留积血,40 g/L多聚甲醛固定,石蜡包埋切片,进行苏木精-伊红染色观察各组大鼠心肌病理变化。采用CIMA 2400图像分析仪测量心肌梗死面积和整个心肌横断面面积,计算心肌梗死部分占心肌横断面面积的百分比。
1.5 主要观察指标 ①TUNEL染色评估心肌细胞的凋亡情况。②Powerlab评估大鼠心功能。③Western Blot方法检测凋亡相关蛋白Bax、caspase-3的表达水平。④组织学观察大鼠心肌病理变化及梗死面积。
1.6 统计学分析 所有数值以x±s表示。采用SPSS 15.0软件,两组间行t 检验,多组间用方差分析作q 检验,P < 0.05为差异有显著性意义。