2.1 反转录病毒重编程绒毛细胞 293T细胞转染绿色荧光蛋白质粒后,可见80%-90%的细胞表达强绿色荧光,证实质粒转染入293T细胞,18 h后用包装hOct4、hSox2、hKlf4和hc-Myc 4个基因的反转录病毒感染绒毛细胞,绿色荧光蛋白显示感染效率80%-90%,见图1a,b。感染后第7天胰酶消化传代;感染后第14天可见绒毛细胞形态发生巨大变化,成颗粒状聚集快速生长,见图1c;感染后第18天,可见克隆样生长细胞,紧密排列,边界明显,见图1d。用自制玻璃细针进行机械法切割,细胞在传代过程中始终保持较高的核浆比例、明显的核仁、呈单层紧密排列、边界清晰,见图1e。
图1 绒毛细胞重编程情况(标尺=50 μm)
Figure 1 Reprogram of villus cells (Bar=50 μm)
2.2 诱导性多能干细胞特异性标志物鉴定 见图2。
未分化诱导性多能干细胞克隆AP检测均呈强阳性。表面抗原SSEA-3、SSEA-4、TRA-1-60以及TRA-1-81免疫荧光反应呈现强阳性;NANOG表达阳性,显示未分化状态。
图2 诱导性多能干细胞特异性标志物鉴定(a:碱性磷酸酶染色,b-f:免疫荧光染色,标尺=50 μm)
Figure 2 Identification of the specific markers of induced pluripotent stem cells (a: alkaline phosphatase staining; b-f: immunofluorescence staining; bar=50 μm)
2.3 诱导性多能干细胞多能性相关基因检测 诱导性多能干细胞与人胚胎干细胞(FY-HES-1)多能性相关基因Oct4、Sox2、NANOG、REX1,呈高表达,远高于未重编程绒毛细胞;基因Klf4、c-Myc表达含量与未重编程绒毛细胞无明显差异,见图3;
图 3 诱导性多能干细胞与FY-HES-1多能性基因Oct4、Sox2、NANOG、REX1呈高表达
Figure 3 High expression of pluripotent genes (Oct4, Sox2, NANOG and REX1) in induced pluripotent stem cells and FY-of HES-1
诱导性多能干细胞外源性转导基因tgOct4、tgSox2、tgKlf4、tgc-MYC表达基本沉默,见图4。
图4 诱导性多能干细胞转导基因tgOct4、tgSox2、tgKlf4、tgc-Myc表达基本沉默
Figure 4 Expression of transduced genes (tgOct4, tgSox2, tgKlf4 and tgc-Myc) in induced pluripotent stem cells was almost silent
2.4 诱导性多能干细胞染色体核型检测 诱导性多能干细胞每隔10代进行一次核型分析,已传至第40代,在传代过程中能维持正常核型46,XY,见图5。
图5 诱导性多能干细胞核型分析,正常核型46,XY
Figure 5 Induced pluripotent stem cells showed normal karyotype 46, XY
2.5 诱导性多能干细胞分化能力检测
体外分化潜能:诱导性多能干细胞在悬浮液中培养第3天形成拟胚体,见图6a,第7天形成囊性拟胚体,见图6b。贴壁分化后3个胚层特异性标记物表达阳性,内胚层-AFP(alpha fetoprotein)、中胚层-心肌抗原(cardiac troponin)、外胚层图(nestin),见图6。
图6 诱导性多能干细胞的体内外分化检测(免疫荧光染色,
标尺=50 μm)
Figure 6 Differentiation of induced pluripotent stem cells
in vitro and
in vivo (immunofluorescence staining: scale bar=50 μm)
体内分化潜能:诱导性多能干细胞接种到联合重症免疫缺陷小鼠腹股沟皮下6周左右,出现肿块;处死小鼠,摘除肿块,做病理切片染色分析可见3个胚层的组织,包括神经管样细胞(外胚层)、脂肪细胞(中胚层)以及肠腺上皮细胞(内胚层),见图7。
图7 诱导性多能干细胞的体内外分化检测(苏木精-伊红染色,标尺=50 μm)
Figure 7 Differentiation of induced pluripotent stem cells
in vitro and
in vivo (hematoxylin-eosin staining; scale bar=50 μm)