聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料修复下颌骨缺损

doi:10.3969/j.issn.2095-4344.0680

中国组织工程研究 ›› 2018, Vol. 22 ›› Issue (34): 5452-5457.doi: 10.3969/j.issn.2095-4344.0680

• 组织工程口腔材料 tissue-engineered oral materials • 上一篇下一篇

聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料修复下颌骨缺损

余和东¹，冷卫东¹，陈永吉¹，倪小兵¹，艾俊¹，谭雅琴¹，罗杰²

十堰市太和医院(湖北医药学院附属医院)，¹口腔医学中心，²神经外科，湖北省十堰市 442000

收稿日期:2018-08-25 出版日期:2018-12-08 发布日期:2018-12-08
通讯作者: 罗杰，主任医师，教授，博士生导师，十堰市太和医院(湖北医药学院附属医院)神经外科，湖北省十堰市 442000
作者简介:余和东，男，1985年生，主治医师，硕士，主要从事骨缺损修复材料的研究。
基金资助:
国家自然科学基金(81671831，51541202)

Repair of mandibular defects with polyetheretherketone/biphase bioceramic composites

Yu Hedong¹, Leng Weidong¹, Chen Yongji¹, Ni Xiaobing¹, Ai Jun¹, Tan Yaqin¹, Luo Jie²

¹Department of Stomatology, ²Department of Neurosurgery, Taihe Hospital (Affiliated Hospital, Hubei University of Medicine), Shiyan 442000, Hubei Province, China

Received:2018-08-25 Online:2018-12-08 Published:2018-12-08
Contact: Luo Jie, Chief physician, Professor, Doctoral supervisor, Department of Neurosurgery, Taihe Hospital (Affiliated Hospital, Hubei University of Medicine), Shiyan 442000, Hubei Province, China
About author:Yu Hedong, Master, Attending physician, Department of Stomatology, Taihe Hospital (Affiliated Hospital, Hubei University of Medicine), Shiyan 442000, Hubei Province, China
Supported by:
the National Natural Science Foundation of China, No. 81671831, 51541202

摘要/Abstract

摘要：

文章快速阅读：

文题释义：

生物活性陶瓷：生物活性陶瓷通常含有羟基，还可做成多孔性，生物组织可长入并同其表面发生牢固的键合；生物吸收性陶瓷的特点是能部分吸收或者全部吸收，在生物体内能诱发新生骨的生长；生物活性陶瓷具有骨传导性，它作为一个支架，成骨可在其表面进行；它还可作为多种物质的外壳或填充骨缺损。生物活性陶瓷有生物活性玻璃、羟基磷灰石陶瓷、磷酸三钙陶瓷等几种。

骨形成蛋白2：是转化生长因子β超家族成员之一，具备诱导未分化的间充质细胞分化为成骨细胞，能够在骨缺损部位提高骨细胞的活性和增殖能力，具有促进骨的修复与再生的作用，是骨形成蛋白家族中成骨能力最强的因子之一，大量研究都证实其能直接或者间接促进骨组织修复。

背景：聚醚醚酮具有较好的亲和性和耐腐蚀性，生物学相容性稳定；生物陶瓷材料具有很好的机械性能和生物亲和性，因此结合聚醚酮与双相生物陶瓷制备复合支架材料，可能会促进骨缺损的修复。

目的：探讨聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料修复兔下颌骨缺损的效果。

方法：将20只新西兰大白兔(购自湖北医药学院动物实验中心)分成4组，对照组不做任何处理，手术组制作下颌骨缺损模型，手术+支架组在下颌骨缺损处植入聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料，假手术组近暴露臼齿槽后直接缝合。术后4，8，16周取下颌骨标本，分别进行苏木精-伊红染色、Goldner’s三色染色及骨形成蛋白2表达检测。

结果与结论：①苏木精-伊红及Goldner’s三色染色显示，手术+支架组术后第4周开始材料内有成骨细胞在孔隙内生长，至第16周时，材料中已大量分布成骨细胞；手术组术后第4周可见肉芽组织和少量成骨细胞，但成骨细胞数量始终少于手术+支架组；②PCR检测显示，手术+支架组术后8，16周的骨形成蛋白2基因表达高于对照组、手术组(P < 0.05或P < 0.01)；③Western Blot检测显示，手术+支架组术后4，8，16周的骨形成蛋白2蛋白表达高于对照组、手术组(P < 0.05或P < 0.01)；④结果表明，聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合支架材料能够有效促进细胞内骨形成蛋白2表达，进而促进成骨细胞生长和分化，有效修复骨缺损。

ORCID: 0000-0002-6321-9160(余和东)

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

关键词: 聚醚醚酮, 双相生物陶瓷, 下颌骨, 骨修复, 骨形成蛋白2, 生物材料

Abstract:

BACKGROUND: Polyetheretherketone has good affinity and corrosion resistance, and its biocompatibility is stable. Bioceramic materials also have good mechanical properties and bio-affinity. Therefore, polyetherketone can be combined with biphase bioceramics to prepare composite scaffolds that may promote the repair of bone defects.

OBJECTIVE: To investigate the effect of polyetheretherketone/biphasic bioceramic composites in the repair of rabbit mandibular defects.

METHODS: Twenty New Zealand white rabbits (purchased from the Animal Experimental Center, Hubei University of Medicine, China) were divided into four groups. In the control group, no treatment was given. In the operation group, a mandibular defect model was made in the rabbit. In the composite scaffold group, polyetheretherketone/biphasic bioceramic composite scaffold was implanted into the mandibular defect. In the sham group, the incision was directly sutured after exposing the gingival groove. Mandibular specimens in each group were taken at 4, 8, and 16 weeks after surgery, and hematoxylin-eosin staining, Goldner’s trichrome staining, and bone morphogenetic protein-2 expression were detected.

RESULTS AND CONCLUSION: (1) Results from the hematoxylin-eosin staining and Goldner’s trichrome staining revealed that: in the composite scaffold group, osteoblasts actively grew into the pores at 4 weeks after surgery, and peaked at 16 weeks, while in the operation group, granulation tissues and a small amount of osteoblasts were visible, but the number of osteoblasts was lower relative to the composite scaffold group. (2) PCR results showed that the mRNA expression of bone morphogenetic protein 2 was significantly higher in the composite scaffold group than the control and operation groups at 8 and 16 weeks after surgery (P < 0.05 or P < 0.01). (3) Western blot results indicated that the protein expression of bone morphogenetic protein 2 was significantly higher in the composite scaffold group than the control and operation groups at 4, 8, 16 weeks after surgery (P < 0.05 or P < 0.01). To conclude, the polyetheretherketone/biphasic bioceramic composite scaffold can effectively promote the expression of bone morphogenetic protein 2 in the cells, and then promote the growth and differentiation of osteoblasts, while effectively repairing bone defects.

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

Key words: Bone Morphogenetic Proteins, Mandible, Tissue Engineering

中图分类号:

R318

余和东，冷卫东，陈永吉，倪小兵，艾俊，谭雅琴，罗杰. 聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料修复下颌骨缺损[J]. 中国组织工程研究, 2018, 22(34): 5452-5457.

Yu Hedong, Leng Weidong, Chen Yongji, Ni Xiaobing, Ai Jun, Tan Yaqin, Luo Jie. Repair of mandibular defects with polyetheretherketone/biphase bioceramic composites[J]. Chinese Journal of Tissue Engineering Research, 2018, 22(34): 5452-5457.

图/表（结果） 5

参考文献

[1] Takahashi Y, Yamamoto M, Tabata Y. Enhanced osteoinduction by controlled release of bone morphogenetic protein-2 from biodegradable sponge composed of gelatin and β -tricalcium phosphate. Biomaterials. 2005;26(23): 4856-65.

[2] Zwitser EW, Jiya TU, Licher HG, et al. Design and management of an orthopaedic bone bank in the Netherlands. Cell Tissue Bank. 2012;13(1):63-69.

[3] Converse GL, Conrad TL, Roeder RK. Hydroxyapatite whisker reinforced polyetherketoneketone bone ingrowth scaffolds. Acta Boimaterials. 2010;32:856-863.

[4] Lee JH, Jang HL, Lee KM, et al. In vitro and in vivo evaluation of the bioactivity of hydroxyapatite-coated polyetheretherketone biocomposites created by cold spray technology. Acta Biomaterials. 2013;9:6177-6187.

[5] Simona S, Antonella P, Stefania L, et al. Improved functions of human hepatocytes on NH3 plasma-grafted PEEK-WC-PU membranes. Biomaterials. 2009;30:4348-4356.

[6] Dennes TJ, Jeffrey S. A Nanoscale Adhesion Layer to Promote Cell Attachment on PEEK. J Am Chem Soc. 2009; 131(10):3456-3457.

[7] Lü K, Zeng D, Zhang Y, et al. BMP-2 Gene Modified Canine bMSCs Promote Ectopic Bone Formation Mediated by a Nonviral PEI Derivative. Ann Biomed Eng. 2011;39(6): 1829-1839.

[8] Seol YJ, Kim KH, Park YJ, et al. Osteogenic effects of bone-morphogenetic-protein-2 plasmid gene transfer. Biotechnol Appl Biochem. 2008;49(1):85-96.

[9] Yu H, Zeng X, Deng C, et al. Exogenous VEGF introduced by bioceramic composite materials promotes the restoration of bone defect in rabbits. Biomed Pharmacother. 2018;98: 325-332.

[10] Rozen N, Lewinson D, Bick T, et al. Role of bone regeneration and turnover modulators in control of fracture. Crit Rev Eukaryot Gene Expr. 2007;17(3):197-213.

[11] Wang Z, Li M, Yu B, et al. Nanocalcium-deficient hydroxyapatite-poly (e-caprolactone)-polyethylene glycol-poly (e-caprolactone) composite scaffolds. Int J Nanomedicine. 2012;7:3123-3131

[12] Levengood SK, Poellmann MJ, Clark SG, et al. Human endothelial colony forming cells undergo vasculogenesis within biphasic calcium phosphate bone tissue engineering constructs. Acta Biomaterialia. 2011;7(12):4222-4228.

[13] Liao F, Chen Y, Li Z, et al. A novel bioactive three-dimensional beta-tricalcium phosphate/chitosan scaffold for periodontal tissue engineering. J Mater Sci Mater Med. 2010;21(2): 489-496.

[14] Yu G, Fan Y. Preparation of poly(D, L-lactic acid) scaffolds using alginate particles. J Biomater Sci Polym Ed. 2008; 19(1):87-98.

[15] 应艳.两种金属烤瓷冠引起MRI伪影的研究[J].口腔材料器械, 2010,19(2):72-74.

[16] 邓纯博,刘冬妍,刘吉泉,等.聚醚醚酮及其复合材料作为骨科植入物的研究进展[J].生物医药工程与临床,2009,13(5):473-476.

[17] Kurtz SM, Devine JN. PEEK biomaterials in trauma, orthopedic, and spinal implants. Biomaterials. 2007;28(32): 4845-4869.

[18] Pace N, Marinelli M. Tehnical and histologic analysis of a retrieved carbon fiber-reinforced polyetheretherketone composite alumina bearing liner 28 months after implantation. J Arthroplasty. 2008;23(1):151-155.

[19] Chen G, Li W, Yu X, et al. Study of the cohesion of TTCP/DCPA phosphate cement through evolution of cohesion time and remaining percentage. J MaterSci. 2009;44(3):828.

[20] Sayer M, Stratilatov AD, Reid J, et al. Structure and composition of silicon-stabilized tricalcium phosphate. Biomaterials. 2003;24(3):369-382.

[21] Lutfy J, Pietak A, Mendenhall SD, et al. Clinical Application of Mathematical Long Bone Ratios to Calculate Appropriate Donor Limb Lengths in Bilateral Upper Limb Transplantation. Hand(N Y). 2018:1558944717753672. doi: 10. 1177/1558944717753672. [Epub ahead of print]

[22] Jang JH, Castano O, Kim HW. Electrospun materials as potential platforms for bone tissue engineering. Adv Drug Deliv Rev. 2009;61(12):1065-1083.

[23] Bonner M, Ward IM, McGregor W, et al. Hydroxyapatite/ polypropylene composite: a novel bone substitute material. J Mater Sci Lett. 2001;20(22):2049-2051

[24] Ishikawa K. Bone substitute fabrication based on dissolution-precipitation reactions. Materials. 2010;3: 1138-1155.

[25] Becker A, Epple M, Mttller KM, et al. A comparative study of clinically well-characterized human atherosclerotic plaques with histological, chemical and ultrastructural methods. J Inorg Biochem. 2014;98(12):2032-2038.

[26] Dorozhkin SV. Amorphous calcium (ortho)phosphates. Acta Biomaterialia. 2010;6(12):4457.

[27] Dean DB, Watson JT, Moed BR,et al.Role of bone morphogenetic proteins and their antagonists in healing of bone fracture.Front Biosci(Landmark Ed). 2009;14: 2878-2888.

引言

材料方法

1.1 设计对比观察动物实验。

1.2 时间及地点实验于2016年4月至2017年9月在湖北医药学院动物实验中心和十堰市太和医院生物医学研究所完成。

1.3 材料

实验动物：20只二三月龄新西兰大白兔，雌雄不拘，体质量2.0-2.5 kg，购自湖北医药学院动物实验中心，许可证号：SCXK(鄂)2016-0008。将20只兔随机分成4组，分别为对照组、手术+支架组、手术组、假手术组，每组5只。

实验用主要试剂：苏木精-伊红染色试剂盒、β-actin、羊抗鼠IgG、羊抗兔IgG(北京中杉金桥)；BSA、Goldner’s三色染色(索莱宝)；RNA提取试剂盒(天根)；RNA反转录试剂盒(康为)；RIP裂解液(普利莱)；骨形成蛋白2(abcom)。

实验用主要设备：肖特基场发射扫描电子显微镜(日本奥林巴斯)；箱式高温烧结炉(合肥科晶材料技术有限公司)；Bio-Rad垂直电泳仪(南京贝登医疗股份有限公司)；Bio-Rad凝胶成像系统(美国Bio-Rad公司)。

1.4 实验方法

1.4.1 聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合支架材料的制备聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合支架材料在华南理工大学材料科学与工程学院国家人体组织功能重建工程技术研究中心和武汉大学口腔医学院牙科分子力学实验室制备，具体方法见前期研究^[9]，然后进行支架材料电镜检测。

1.4.2 动物模型建立与标本处理对照组为正常兔，不做任何处理。

造模方法：实验组大白兔在进行实验前禁食12 h，将兔固定在手术台上，耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1 mL/kg麻醉，切开皮肤暴露臼齿槽部位，用牙科打磨钻打磨一个12 mm×10 mm×2 mm的孔，所有兔都在同侧进行造模。手术组兔只做颌骨缺损造模打孔，但不植入复合支架材料。手术+支架组兔在颌骨缺损造模打孔，同期植入复合支架材料；假手术组兔只暴露臼齿槽不做打孔处理，直接缝合。手术结束后，连续3 d内注射80×10⁴ U的青霉素进行抗炎。

标本处理：饲养4，8，16周后，采用骨钻截取植入材料，去部分下颌骨；术后第4周时各组随机选取1只兔，术后第8，16周时各组随机选取2只兔。

1.5 主要观察指标

苏木精-伊红染色观察成骨情况：将处理好的标本玻片进行脱蜡，再进行染色。将已入蒸馏水后的切片放入苏木精水溶液中染色数分钟。酸水及氨水中分色，各数秒钟。流水冲洗1 h后入蒸馏水片刻。入体积分数70%和90%乙醇中脱水各10 min。入乙醇伊红染色液染色2.0-3.0 min。染色后的切片经纯乙醇脱水，再经二甲苯使切片透明。将已透明的切片滴上加拿大树胶，盖上盖玻片封固。待树胶略干后，贴上标笺，切片标本就可使用。

Goldner’s三色染色观察成骨情况：切片二甲苯脱蜡或脱塑料，乙醇漂洗，入水。入配制好的Weigert铁苏木精染色。流水冲洗1 min，用酸性分化液迅速分化(一般< 5 s)。流水冲洗，蒸馏水稍洗。入Acid Ponceau染色液染色。在上述过程中按蒸馏水∶弱酸溶液=4∶1比例配制弱酸工作液，用弱酸工作液洗。入Orange G染色液染色，直至Ponceau染色液。用配制好的弱酸工作液冲洗。直接入亮绿染色液中染色。用配制好的弱酸工作液冲洗3次。蒸馏水冲洗，吸干或晾干，无水乙醇快速脱水，中性树胶封固。

PCR检测骨形成蛋白2 mRNA表达：根据试剂盒的说明书，提取RNA并反转录成cDNA，冻存在-80 ℃冰箱中。设计并反转录，将上述得到的RNA通过反转录(HiFiScript cDNA 第一链合成试剂盒CWBIO CW2569)合成CDNA：①反转录体系：dNTP Mix 4 μL，Primer Mix 2 μL，RNA Template 7 μL，5×RT Buffer 4 μL，DTT 2 μL，HiFiScript 1 μL。涡旋震荡混匀，短暂离心，使管壁上的溶液收集到管底。加入dNTP Mix、Primer Mix、RNA Template后，70 ℃孵育10 min，再迅速冰浴2 min；再加入5×RT Buffer、DTT、HiFiScript，50 ℃孵育15 min，85 ℃孵育5 min；②PCR操作体系：RNase Free dH₂O 9.5 μL，cDNA/DNA 1 μL，上游引物1 μL，下游引物1 μL，2×GoldStar Taq MasterMix 12.5 μL；③反应程序，三步法：预变性，95 ℃ 3 min；变性，95 ℃ 10 s；退火，50-55 ℃ 30 s；延伸，72 ℃30 s；40个循环；终延伸，72 ℃10 min。引物序列见表1。

Western Blot检测骨形成蛋白2的蛋白表达：将组织从液氮中取出，锯下需要检测的部位，用液氮研磨成细末。加入含有PMSF的裂解液中充分裂解。4 ℃、12 000 r/min离心10 min，收集上清，加入5×loading buffer。用沸水煮沸5 min，4 ℃、12 000 r/min离心3 min，收集上清。①配置SDS-PAGE胶：15%分离胶10 mL(ddH₂O 3.3 mL、30%丙烯酰胺4 mL、10%AP 0.1 mL、10%SDS 0.1 mL、TEMED 5 μL)、10%分离胶10 mL[ddH₂O 4 mL、30%丙烯酰胺 3.3 mL、10%AP 0.1 mL、10%SDS 0.1 mL、Tris 2.5 mL (pH=8.8)、TEMED 5 μL]、5%浓缩胶10 mL[ddH₂O 2 mL、30%丙烯酰胺0.5 mL、10%AP 0.03 mL、10%SDS 0.03 mL、Tris 0.38 mL(pH=6.8)、TEMED 4 μL]；②按照配方配好分离胶，加入已架好的制胶板中。缓慢加入至板的2/3的位置。加入无水乙醇压胶。待分离胶凝固后，加入浓缩胶，并插上齿梳；③等到浓缩胶完全凝固后，稀释10×的电泳液；④将架子放入到电泳液里拔去齿梳，加入一定体积的蛋白样品和Marker；⑤开始电泳，60 V压缩蛋白，80 V分离蛋白；⑥当条带跑至一半到胶板一半的时候配置转膜液，并预冷；⑦根据预计条带的位置裁剪好PVDF膜，甲醇激活15 s；⑧切好大小合适的胶，含有目的条带；⑨布好“三明治”(海绵-滤纸-胶-膜-滤纸-海绵)；⑩根据电流电压和相对分子质量大小，控制转膜时间，1 h 30 min左右；?配置5% BSA封闭液，封闭过夜；?配置1抗稀释液，将PVDF膜孵育一抗3 h；洗膜，10 min×3；?配置2抗稀释液，将PVDF膜孵育2抗2 h；?洗膜，10 min×3；?配置发光液，成像。

1.6 统计学分析所有数据均用SPSS 19.0统计分析，用x(_)±s表示，经t 检验显著性差异，以P < 0.05作为差异有显著性意义。

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

讨论

各种原因所造成的下颌骨缺损的再生和修复一直以来都是临床治疗的难题。临床上最常用的修复方法是自体骨移植、异体骨移植等，但都存在局限性，例如取材难、术后反应重、易感染或者排斥反应等^[10]，因此骨移植在临床治疗上有着极大的难处^[11-12]。为了能够更好地修复骨组织，使用组织工程骨已成为一种热门方法。随着组织工程骨研究的深入，发现人工合成的人工生物材料不仅能够解决传统自体骨或者异体骨取材难的问题，还有着非常好的生物相容性，能够促进细胞增殖分化，促进骨组织修复。大量研究发现，复合材料能够对骨组织修复起到更好的促进作用，所以组织工程骨研究的迅速发展为骨修复带来了新的希望^[13-15]。

聚醚醚酮是一种半结晶有机高分化合物，有着优良的热塑性和生物降解性及生物相容性，并且耐高温、耐磨损和腐蚀，还有着放射线透过性、核磁共振扫描不产生伪影等优点^[16]，因此被作为脊椎植入物替代物，这一发现使得聚醚醚酮在医学领域里具有广阔的应用前景，因此经过多年的研究和发展它已成为一种重要骨科植入材料^[17]。另外，研究发现聚醚醚酮可作为腰椎融合器、心脏瓣膜等假体材料、金属植入材料的替代品，已被广泛接受和应用，并取得了令人满意的效果^[18-19]。

生物陶瓷材料是口腔临床上最长使用的研究材料之一，应用到颅颌面外科学方面的生物陶瓷材料主要有羟基磷灰石和β-磷酸三钙，其具有相应的生物功能，并有着很好的机械性能和生物亲和性，使得生物陶瓷材料的研究前景十分广泛^[20-22]。

实验扫描电镜检查观察到聚醚酮/双相生物陶瓷复合材料呈多孔网状结构，且孔间相互连通，这种多孔径可为骨组织生长入提供一个理想的环境。近年来的研究发现，材料中的孔径结构分布、大小形态等因素决定着陶瓷生物功能^[23-25]。

通过在新西兰大白兔下颌骨处打孔制作下颌骨缺损模型，手术+支架组植入相应的支架并饲养到相应的时间点后，处死大白兔进行取材。经过苏木精-伊红和Goldner’s三色染色检测发现，术后4周时，手术组缺损处开始长了一些组织，但是缺损面积还是十分大，手术+支架组支架孔隙内已可见到细胞了，说明骨修复正在进行，但是术后第4周时细胞生长并不多；术后第16周时，手术组缺损部位也正在修复，但是骨量一直不多，手术+支架组支架内已经有着大量骨细胞，说明聚醚酮/双相生物陶瓷复合材料能够有效促进骨细胞的生长和分化，能够修复缺损的骨组织，并且相容性良好。

早已有研究发现在骨自我修复的过程中，生物活性因子发挥着重要作用，骨形成蛋白在促进骨组织形成中起着很重要的作用^[26]。骨形成蛋白2是40多种骨形成蛋白中具有多功能的细胞蛋白，能够促进细胞增殖和分化，提高细胞活性，能够特异性诱导成骨细胞形成，因此在骨修复中有极大的作用。Dean等^[27]发现骨形成蛋白2的特性之一是骨诱导性，能够诱导骨髓干细胞分化为成骨细胞，促进干细胞加速向成骨细胞分化。骨形成蛋白能够诱导骨细胞的分化和生长，诱导骨形成，其中骨形成蛋白2的效果最为显著，是骨修复中重要的因子之一。研究发现，手术组内骨形成蛋白2表达增高，这意味着在骨缺损时组织表达的骨形成蛋白2开始起着促进骨修复的作用，而手术+支架组骨形成蛋白2大量表达，意味着聚醚酮/双相生物陶瓷复合材料能够有效促进骨形成蛋白2表达，成功促进细胞生长并诱导细胞分化，加速骨缺损部位的吸附作用。

通过以上研究发现，聚醚酮/双相生物陶瓷复合材料有着很好的生物相容性，能够有效促使细胞内骨形成蛋白2表达，促进成骨细胞生长和分化，有效地修复骨缺损，为下颌骨缺损的临床治疗带来新的思路。

中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料; 口腔生物材料; 纳米材料; 缓释材料; 材料相容性；组织工程

聚醚醚酮/双相生物陶瓷复合材料修复下颌骨缺损

Repair of mandibular defects with polyetheretherketone/biphase bioceramic composites

PDF

可视化

摘要/Abstract

引用本文

使用本文

图/表（结果） 5

参考文献

相关文章 15

引言

材料方法

讨论

文章快阅

延伸阅读

编辑推荐

Metrics

本文评价

[1]	樊佳兵, 张军梅. 成年女性不同垂直骨面型下颌骨形态的测量分析[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(8): 1177-1183.
[2]	李黎, 马力. 磁性壳聚糖微球固定化乳糖酶及其酶学性质[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 576-581.
[3]	刘旒, 周箐竹, 龚桌, 刘博言, 杨斌, 赵娴. 胶原/无机材料构建组织工程骨的特点及制造技术[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(4): 607-613.
[4]	邢浩, 张永红, 王栋. 长骨大段骨缺损修复方法的优势与不足[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(3): 426-430.
[5]	周武, 王彬娉, 王雅雯, 程亚楠, 黄谢山. 转化生长因子β和骨形成蛋白2联合诱导小鼠成骨细胞系MC3T3-E1细胞的增殖与分化[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(23): 3630-3635.
[6]	周安琪, 唐渝菲, 吴秉峰, 向琳. 骨膜组织工程设计：共性与个性的结合[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3551-3557.
[7]	郎丽敏, 何生, 姜增誉, 胡奕奕, 张智星, 梁敏茜. 导电复合材料在心肌梗死组织工程治疗领域的应用进展[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3584-3590.
[8]	刘鋆, 杨龙, 王伟宇, 周玉虎, 吴颖, 卢涛, 舒莉萍, 马敏先, 叶川. 聚3-羟基丁酸酯4-羟基丁酸酯/聚乙二醇/氧化石墨烯组织工程支架的制备和性能评价[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(22): 3466-3472.
[9]	杨腾云, 李彦林, 刘德健, 王国梁. 外周血源性间充质干细胞修复骨关节炎软骨损伤的应用前景与问题[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(19): 3071-3076.
[10]	王宏远, 王薇, 杨树青, 窦丽鑫, 刘利军. 多孔氮氧生物玻璃骨修复支架的制备及性能[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(16): 2521-2527.
[11]	解健, 苏俭生. 静电纺丝取向纳米纤维作为组织工程生物支架的优势与特征[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(16): 2575-2581.
[12]	纪琦, 喻正文, 张剑. 3D打印金属基生物材料工艺和临床应用的问题与趋势[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(16): 2597-2604.
[13]	宋涯含, 吴云霞, 范道洋. 基于VOSviewer生物医学领域3D打印的知识图谱分析[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(15): 2385-2393.
[14]	钱楠楠, 张潜, 杨睿, 敖俊, 章涛. 间充质干细胞治疗脊髓损伤：细胞治疗及联合新药和生物材料[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(13): 2114-2120.
[15]	罗雅馨, 毕浩然, 陈晓旭, 杨琨. 细胞外基质与组织的再生与修复[J]. 中国组织工程研究, 2021, 25(11): 1785-1790.