1.1 设计 随机体外细胞实验,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析,组内比较采用LSD-t检验。
1.2 时间及地点 实验于2022年9月至2023年1月在泰州市人民医院实验室完成。
1.3 材料
1.3.1 组织标本 选择泰州市人民医院2020年9月至2022年9 月收治的20 例半月板损伤(正常对照)和20 例膝骨关节炎患者,其中半月板损伤患者男14 例,女6 例,平均年龄(58.72±8.15) 岁;膝骨关节炎患者男13 例,女7 例,平均年龄(60.32±10.11) 岁。将所有患者膝关节样本组织置于液氮中保存,于-80 ℃冰箱冻存。
纳入标准:年龄均为20-78 岁;膝骨关节炎经病理诊断确诊。
排除标准:既往存在关节外科及其他关节炎疾病;恶性肿瘤;其他代谢性疾病。
此次研究经泰州市人民医院医学伦理委员会批准(医院伦理批件号:TRY202209096,审批时间:2022-09-11),所有受试者均知情同意并自愿参与此次研究。
1.3.2 主要试剂 胰蛋白酶、胎牛血清、DMEM/F12培养液、Ⅱ型胶原酶、高糖DMEM培养液购于北京百奥创新科技有限公司;MTT及凋亡试剂盒购于上海碧云天公司;Lipofectamine 3000试剂盒、双荧光素酶试剂盒、BCA试剂盒、ECL试剂购于北京索莱宝公司;细胞序列及引物由上海吉玛公司设计合成;Trizol试剂盒、反转录试剂盒、荧光定量试剂盒购于日本TaKaKa公司;Bcl-2抗体、DNMT3A抗体、增殖细胞核抗原抗体、Bax抗体、GAPDH抗体及二抗购于Abcam公司。
1.4 方法
1.4.1 细胞分离、培养 将半月板损伤、膝骨关节炎患者软骨组织用PBS冲洗干净,去除中心软骨,使用无菌剪剪成1 mm3组织块,在组织块中加入含0.25%胰蛋白酶、体积分数10%胎牛血清的DMEM/F12培养液(含1%青-链霉素)消化30 min,加入含0.2%Ⅱ型胶原酶、体积分数10%胎牛血清的DMEM/F12培养液(含1%青-链霉素)培养16 h,3 000 r/min离心5 min弃上清液,PBS洗涤3 遍,经200 目过筛,即原代软骨细胞。将细胞培养在含有体积分数10%胎牛血清、100 U/mL青霉素及100 μg/mL链霉素的高糖DMEM/F12培养液,置于37 ℃、体积分数5%CO2培养,细胞融合度达到90%进行消化传代培养。实验设置3 个复孔,进行3 次重复。
1.4.2 细胞转染和分组 收集生长良好的膝骨关节炎软骨细胞接种6 孔板中,每孔细胞数1×105 个,按照Lipofectamine 3000试剂盒操作进行转染,将抑制物对照si-NC、circ-BRWD1抑制物si-circ-BRWD1、过表达对照miR-NC、miR-488-3p模拟物miR-488-3p转染至细胞中,记为si-NC组、si-circ-BRWD1组、miR-NC组、miR-488-3p组;将si-circ-BRWD1与miR-NC抑制物对照anti-miR-NC、si-circ-BRWD1与miR-488-3p抑制物anti-miR-488-3p、miR-488-3p与空载体vector、miR-488-3p与DNMT3A过表达DNMT3A共转染细胞中,记为si-circ-BRWD1+anti-miR-NC组、si-circ-BRWD1+anti-miR-488-3p组、miR-488-3p+vector组、miR-488-3p+DNMT3A组。细胞转染12 h后更换细胞液,继续培养48 h收集细胞进行实验。
1.4.3 实时荧光定量PCR 收集半月板损伤、膝骨关节炎患者软骨细胞及1.4.2中各组软骨细胞,使用Trizol试剂提取细胞中总RNA;利用反转录试剂盒进行cDNA合成,最后参照荧光定量试剂盒进行扩增,采用2-ΔΔCt方法计算circ-BRWD1、miR-488-3p、DNMT3A mRNA表达水平,分别以GAPDH、U6作为内参,具体引物序列见表1。
1.4.4 MTT实验 收集1.4.2各组细胞,以2×103 个/孔接种96 孔板中,培养至48 h后每孔中加20 μL MTT试剂,培养4 h后弃上清,每孔加150 μL二甲基亚砜,结晶溶解后置于酶标仪490 nm处检测吸光度值,并计算细胞增殖活性。
1.4.5 流式细胞术实验 收集1.4.2各组细胞并用预冷PBS冲洗3 遍,使用1×Binding buffer重悬细胞,加膜联蛋白V-异硫氰酸荧光素、碘化丙啶各5 μL,遮光反应10 min,上流式细胞仪检测细胞凋亡情况。
1.4.6 Western blot法 将RIPA裂解液加入1.4.2各组细胞中,用于提取细胞用蛋白,用BCA试剂盒进行定量检查,加入蛋白缓冲液煮沸变性5 min,以35 μg/孔加蛋白样品,经SDS-PAGE
电泳处理,转移至PVDF膜,封闭培养2 h,加兔抗DNMT3A (1∶800)、增殖细胞核抗原(1∶800)、Bcl-2 (1∶800)、Bax (1∶800)及内参GAPDH (1∶1 500),4 ℃过夜孵育24 h,加二抗(1∶5 000)室温孵育1 h, 滴加ECL显色、显影。采用Image J 软件检测各条带灰度值。
1.4.7 双荧光素酶报告实验 经starbase预测显示circ-BRWD1与miR-488-3p、miR-488-3p与DNMT3A之间存在结合位点,并构建含有miR-488-3p结合序列的circ-BRWD1、DNMT3A,将结合位点、突变位点序列克隆至pGL3质粒上获得circ-BRWD1、DNMT3A野生型载体(WT circ-BRWD1、WT DNMT3A)、突变型载体(MUT circ-BRWD1、MUT DNMT3A),分别与miR-NC或miR-488-3p共转染至膝骨关节炎软骨细胞,培养48 h经双荧光素酶试剂盒检测荧光素酶活性。
将vector、circ-BRWD1、anti-miR-NC、anti-miR-488-3p转染至膝骨关节炎软骨细胞中,采用实时荧光定量PCR检测circ-BRWD1、miR-488-3p、DNMT3A mRNA表达水平,Western blot法检测DNMT3A mRNA蛋白表达。
1.5 主要观察指标 膝骨关节炎软骨细胞中circ-BRWD1、miR-488-3p、DNMT3A表达水平;MTT、流式细胞术、Western blot法检测各组细胞增殖及凋亡情况;双荧光素酶报告实验验证circ-BRWD1与miR-488-3p、miR-488-3p与DNMT3A靶向关系。
1.6 统计学分析 使用GraphPad Prism 8.0分析数据和绘图,以x±s表示,两组间比较采用独立样本t检验,多组间比较采用单因素方差分析,组内比较采用LSD-t检验。P < 0.05为差异有显著性意义。