1.1 设计 体外细胞实验,多组间比较采用ANOVA单因素方差分析。
1.2 时间及地点 实验于2021年6月至2022年9月在苏州大学骨科研究所以及无锡市第九人民医院骨科研究所完成。
1.3 材料
1.3.1 实验细胞 C57BL/6小鼠BMSCs购自美国赛业,使用α-MEM完全培养基(含体积分数为10%胎牛血清)进行传代培养,细胞在皿内扩增融合至80%左右,加入适量0.25%胰酶消化液将细胞消化于15 mL离心管中传至下一代,传代比例为1∶3,约3 d换液1次,待细胞扩增融合至90%左右用于实验或继续传代。
1.3.2 实验主要试剂 棕榈酸(MCE生物科技,美国);α-MEM培养基(CORNING,美国);鸢尾素(Enzo Life Science,美国);澳洲特级胎牛血清(Gibco,美国);0.25%胰蛋白酶(Gibco,美国);细胞培养用青霉素-链霉素(Gibco,美国);流式抗体 CD31-PE-Cy7、CD117-eFlour450、CD44-PerCP-Cy5.5、CD29-PE(Biolegend,美国);β-甘油磷酸钠、抗坏血酸、地塞米松(MCE,美国); PBS(碧云天,中国);40 g/L多聚甲醛(Biosharp,中国);Cell Counting Kit-8试剂盒(Dojindo,日本);BCIP/NBT显色试剂盒(碧云天,中国);茜素红染色液(赛业,美国);Trizol (赛默飞,美国);PCR引物(上海生工生物股份有限公司,中国);RIPA(新赛美,苏州);BCA蛋白定量试剂盒(Abcam,美国);电泳液(MCE生物科技,美国);转膜液和洗涤液(碧云天,中国);PAGE凝胶快速制备试剂盒(雅酶,中国);BMP2抗体、t-AMPK 抗体、p-AMPK 抗体、t-SMAD1/5/9抗体、p-SMAD1/5/9 抗体(Abcam,美国)。
1.4 实验方法
1.4.1 流式鉴定 待BMSCs生长到约90%汇合时,用预热的0.25%胰酶消化后离心;弃上清,用提前混合了小鼠CD31-PE-Cy7(0.2 μL)、CD117-eFlour450(0.2 μL)、CD44-PerCP-Cy5.5 (0.2 μL)、CD29-PE(0.2 μL)抗体的100 μL含体积分数为2%胎牛血清的PBS重悬(1×106个细胞),4 ℃避光孵育30 min,含体积分数为2%胎牛血清的PBS洗涤1遍,加入400 μL含体积分数为2%胎牛血清的PBS重悬,流式细胞仪检测,FlowJo v10软件分析数据。
1.4.2 BMSCs分组 ①OB组:α-MEM培养基预处理24 h后成骨诱导;②OB+IRI组:α-MEM培养基+5 μg/L鸢尾素预处理24 h后成骨诱导;③OB+PA组:α-MEM培养基+0.02 mmol/L棕榈酸预处理24 h后成骨诱导;④OB+PA+IRI组:α-MEM培养基+5 μg/L鸢尾素+0.02 mmol/L棕榈酸共同预处理24 h后成骨诱导。
1.4.3 细胞增殖与毒性检测实验 将第3代BMSCs以2×103/孔的密度接种于96孔板,待细胞贴壁后,用CCK-8试剂盒检测不同浓度(0,0.01,0.02,0.05,0.1,0.2,0.4,0.5,1 mmol/L)棕榈酸在不同时间(6,12,24 h)对细胞增殖活性的影响。在不同时间点(6,12,24 h)弃去孔板上清后每孔加入100 μL含10% CCK-8工作液的培养基,37 ℃培养箱中避光孵育2 h,吸取含工作液的培养基至新的96孔板,酶标仪测定其在450 nm处吸光度值。
将第3代BMSCs以2×103/孔的密度接种于96孔板,待细胞贴壁后,加入0.02 mmol/L棕榈酸和不同质量浓度的鸢尾素(0,0. 1,1,5,10,20 μg/L)共同干预24 h,采用CCK-8试剂盒检测细胞的增殖活性,具体步骤:在干预24 h弃去孔板上清后每孔加入100 μL含10% CCK-8 工作液的培养基,37 ℃培养箱中避光孵育2 h,吸取含工作液的培养基至新的96孔板,酶标仪测定其在450 nm处吸光度值。
1.4.4 细胞成骨诱导 配制成骨诱导培养基:在含体积分数为10%胎牛血清的α-MEM培养基50 mL中加入抗坏血酸、地塞米松和β-甘油磷酸钠配置成终浓度分别为50 mg/L、0.1 μmol/L和10 mmol/L的成骨诱导培养基。
将预处理24 h的BMSCs以1×104/孔的密度接种在24孔板中,以8×104/孔的密度接种在6孔板中,分别加入成骨培养基进行成骨诱导。
1.4.5 碱性磷酸酶染色 在成骨诱导的第7天,弃去24孔板中的培养基,加入PBS清洗2次;每孔加入适量40 g/L多聚甲醛平铺孔板底部固定30 min后,弃去固定液,PBS洗涤2次;配制BCIP/NBT工作液:显色液3 mL、BCIP 溶液10 μL、NBT溶液20 μL,加入适量工作液,室温避光孵育30 min;吸除染液,PBS缓慢吹洗3遍后,在显微镜下观察。
1.4.6 茜素红染色 成骨诱导的第21天,弃去24孔板中的培养基,PBS 清洗2遍;每孔加入40 g/L多聚甲醛固定30 min后,PBS洗涤2次;每孔加入500 μL 茜素红染液,室温避光孵育 30 min;吸出染液,PBS洗3遍,在显微镜下观察。
1.4.7 实时荧光定量 PCR(qRT-PCR) 成骨诱导培养第7天时,弃去6孔板中的培养基,PBS洗涤2次后每孔加入1 mL Trizol,冰上裂解10 min转移至1.5 mL EP管;每个EP管中加入1/5体积的氯仿(200 μL),充分摇匀15 s后冰上静置10 min,12 000×g离心10 min;离心后上层的无色水相转移至EP 管。在管中加入与水相等体积的异丙醇,缓慢上下颠倒后室温静置5-10 min,4 ℃,12 000×g离心10 min,可见 RNA 沉淀沉于管壁;加入 1 mL体积分数为75%乙醇充分吹打混匀,洗涤RNA后4 ℃,12 000×g离心10 min;体积分数为75%乙醇重复洗涤1次;室温晾干,根据提取的RNA浓度加入适量DEPC水之后金属浴5-8 min,测定RNA 浓度。按照说明书使用反转录试剂盒将RNA反转录成cDNA后进行 qRT-PCR 检测成骨特异转录因子、Runt相关转录因子2、骨形态发生蛋白2和碱性磷酸酶等成骨相关基因的表达,引物序列见表1。
1.4.8 Western blot检测 在成骨诱导第7天时,弃去6 孔板中的培养基,PBS洗涤2次,加入适量RIPA提取蛋白,BCA法测定蛋白浓度;制胶,在制备好凝胶的孔中加入等质量的蛋白样品,电泳阶段:60 V,15 min再100 V,1 h;转膜阶段:300 mA,1 h,封闭1 h;加入一抗β-actin、骨形态发生蛋白2、t-AMPK,p-AMPK和t-SMAD1/5/9和p-SMAD1/5/9孵育过夜,加入二抗孵育1 h,洗涤条带并曝光,用ImageJ软件对曝光后条带进行定量分析。
1.5 主要观察指标 鸢尾素对棕榈酸干预的BMSCs增殖与成骨分化的作用。
1.6 统计学分析 用GraphPad Prism 8.3软件进行统计分析,实验结果以x±s表示,多组间比较用ANOVA 单因素方差分析,P < 0.05为差异有显著性意义。统计学方法已通过苏州大学生物统计学专家审核。