1.1 设计 材料合成实验与材料表征,细胞实验,组间比较进行t检验。
1.2 时间及地点 材料制备与材料表征于2020年5-12月在四川大学华西口腔医学院/口腔疾病研究国家重点实验室完成,细胞实验于2021年1月至2022年3月于西安交通大学口腔医学检测中心(陕西省颅颌面精准医学研究重点实验室)完成。
1.3 材料
1.3.1 实验动物 出生24 h内的SD大鼠10只,购自西安交通大学动物中心。实验过程参考国际惯例,遵循国家有关法律、法规,实验动物通过乙醚麻醉后快速颈椎脱位法处死,尽量缩短动物承受痛苦时间。实验方案经西安交通大学医学部生物医学伦理委员会批准。
1.3.2 实验试剂 石墨粉(100目)购自阿法埃莎(中国)化学有限公司;壳聚糖(分子质量10-30 kD,纯度为99%)购自西雅试剂中心;钛片购自泰宇鑫金属材料有限公司;PBS(pH=7.40)和去离子水、高糖型改良DMEM培养基、胎牛血清和0.25%胰蛋白酶-EDTA均购自美国GiBCO生物公司;青霉素-链霉素混合溶液购自美国Hyclone公司;Ⅰ型胶原酶购自Biosharp公司;细胞增殖与毒性检测试剂盒(CCK-8)购自日本同仁化学研究所;乙酸、氢氧化钠、3-氨丙基三乙氧基硅烷、戊二醛均为分析纯。
1.4 实验方法
1.4.1 单纯壳聚糖和氧化石墨烯/壳聚糖复合涂层的制备
制备氧化石墨烯:氧化石墨烯通过改良的Hummers法制备[11-12]。将石墨粉在强氧化剂和超声波作用下氧化剥落后,依次用5%盐酸和双蒸水洗涤,直至pH值接近中性,离心弃去沉淀,最终得到氧化石墨烯水溶液。
制备涂层溶液:将1 g的壳聚糖加入2%乙酸水溶液中,不断搅拌直至壳聚糖完全溶解得到壳聚糖溶液;将氧化石墨烯溶液在超声下分散30 min后,逐滴加入搅拌中的壳聚糖溶液中,滴加完毕后持续搅拌1 h,使两种溶液充分混合,控制氧化石墨烯的加入量,使壳聚糖中氧化石墨烯质量分数为0.5%,得到氧化石墨烯/壳聚糖复合涂层溶液。将壳聚糖溶液和等体积的双蒸水进行混合,得单纯壳聚糖涂层溶液。
涂层的制备:通过溶液共混法制备钛片表面涂层[13-14],使用3-氨丙基三乙氧基硅烷对钛表面进行处理,在钛片表面形成硅烷基团,接着用戊二醛使壳聚糖与硅烷基团形成交联。使用前将钛片依次以240#、400#、600#、1 000#、1 500#、2 000#的砂纸打磨光滑,并用丙酮、乙醇和去离子水超声清洗,在3∶7的硝酸-去离子水溶液中浸泡30 min;去离子水洗净,然后将钛片浸泡于含2% 3-氨丙基三乙氧基硅烷的甲苯中24 h,置于纯甲苯中超声清洗30 min,接着依次用乙醇和纯水清洗;将钛片再浸泡于2%戊二醛水溶液中24 h;超纯水洗净,将单纯壳聚糖涂层溶液或氧化石墨烯-壳聚糖复合涂层溶液旋涂于处理后的钛片表面,使钛片表面被溶液覆盖,静置1 h后以5 000 r/min的速度旋转60 s,置于60 ℃干燥箱中干燥;将涂层好的钛片依次浸泡在0.2 mol/L的磷酸氢二钠溶液和纯水中以除去残留的乙酸,分别制得单纯壳聚糖涂层与氧化石墨烯/壳聚糖复合涂层。
1.4.2 涂层的性能测定与表征 ①涂层的表面形貌通过美国FEI公司的场发射扫描电子显微镜(FEI Inspect F)表征,使用数码镜头型号为MEGA VIEW-II DOCU,加速电压为20 kV;②氧化石墨烯的形貌和尺寸由日本岛津公司SPM-9700原子力显微镜在轻敲模式下进行表征;③涂层的化学组成由美国尼高力仪器公司的IS10傅里叶变换红外光谱仪进行表征,将 KBr和测试材料的混合物研磨成充分混合的超细粉末并压制成透明薄片,光谱检测范围为500-4 000 cm-1;④亲水性的测定使用的是 DataPhysics’OCAH 200光学高速接触角测量系统,将10 μL双蒸水滴在涂层材料表面,利用软件对液滴图片分析,测定接触角。所有实验独立重复操作3次,取平均值。
1.4.3 成骨细胞原代培养 选用出生24 h内的SD大鼠,无菌条件下分离大鼠颅骨并浸泡于PBS中,将颅骨上可视的血管筋膜等结缔组织去除,然后将颅骨剪碎成大小约1 mm×1 mm的小碎片,并将碎片浸泡于0.25%的胰蛋白酶-EDTA中,在37 ℃条件下放置20 min,以进一步将结缔组织消化去除。接着,将胰蛋白酶消化液弃去,留下的骨碎片用PBS洗涤3次,接着用0.075%的Ⅰ型胶原酶在37 ℃条件下消化60 min;消化完成后弃去骨碎片,并将消化液移至一个新的15 mL离心管中,加入含血清培养基中和胶原酶,1 000 r/min离心5 min,弃去上清液;用含体积分数10%胎牛血清、1%青霉素-链霉素的H-DMEM重悬沉淀,得到单细胞悬液,将细胞悬液分装至T25的培养瓶中,放入细胞培养箱中培养,细胞培养的条件为:温度37 ℃、体积分数5%CO2、体积分数95%空气。5 d后首次换液,待细胞融合率达到80%时传代。选择P1、P2代用于后续的细胞实验。
1.4.4 涂层对细胞增殖的影响 将两种涂层后的钛片(直径15 mm)紫外消毒后置于24孔板底部,将大鼠成骨细胞接种于两种涂层表面,每孔细胞数量为5×104,培养液量为0.5 mL。接种后24,48,72 h,首先将原有培养基弃去,用PBS洗涤贴壁细胞,接着计算所需反应液的量,配制含有10%CCK-8试剂的无血清培养基,每孔中加入500 μL的CCK-8反应液,在37 ℃条件下孵育2 h后,吸取100 μL反应后的上清液并移至一个新的96孔板对应的孔中,用多功能酶标仪(Varioskan Flash 3001)在450 nm波长测量各孔的吸光度值。
1.4.5 涂层对细胞铺展的影响 将两种涂层后的钛片(直径15 mm)铺于24孔板底部,将成骨细胞接种于涂层表面,每孔细胞数量为2.5×105,培养液量为0.5 mL。24 h后弃去细胞培养液,用PBS洗涤2次后,加入含有2.5%戊二醛的电镜标本固定液,在4 ℃条件下固定过夜,接着弃去固定液,用不同体积分数乙醇进行梯度序列脱水(50%,60%,70%,80%,90%),其中每一梯度浓度乙醇脱水时间为10 min。最后将脱水完成后的材料放置于通风处晾干,得到的干燥的细胞+材料标本进行喷金,扫描电镜下观察。
1.4.6 涂层对细胞成骨相关基因表达的影响 选用直径33.9 mm的钛片制备两种涂层,并将涂层后的钛片铺于6孔板底部,将大鼠成骨细胞接种于涂层材料表面,每孔细胞数量为5×105,培养液量为2.5 mL。培养第1,2,4,7天,对孔板内细胞进行RNA收样,使用Bioteke公司总RNA提取试剂盒(Trizol法)对RNA进行分离提纯。
RNA反转录成cDNA使用TaKaRa的PrimeScript RT Reagent试剂盒,凝胶电泳使用西班牙的Biowest琼脂糖。PCR反应试剂及步骤为:TIANGEN Taq PCR MasterMix 12.5 µL,cDNA 1 µL,引物2 µL,无酶水 9.5 µL,将以上试剂混合,然后于PCR扩增仪中95 ℃下预变性3 min,再以下述步骤重复30-35圈:95 ℃变性30 s,63 ℃退火30 s,72 ℃合成30 s;循环结束后,72 ℃下保持10 min后反应结束,样品保持4 ℃保存。
PCR产物使用琼脂糖凝胶电泳进行分析,DNA染料使用GoldView Ⅱ型核酸染色剂(Solarbio),电泳后利用凝胶成像系统(Gel Doc 2000 system,BIO RAD,U.S.)进行条带的显像和拍摄,利用软件quantity one和Image Pro Plus 6.0对条带进行定量分析,所用引物的序列见表1。
1.5 主要观察指标 两种涂层的理化性能及对成骨细胞增殖与分化的影响。
1.6 统计学分析 使用SPSS 21.0软件(SPSS,美国)进行数据处理,组间比较采用t检验,P < 0.05为差异有显著性意义。该文统计学方法己由西安交通大学生物统计学专家审核。