1.1 设计 随机对照动物实验。
1.2 时间及地点 实验于2018年1至3月在广西医科大学完成。
1.3 材料
1.3.1 实验动物 SPF级雌性SD大鼠120只,体质量180-220 g,由广西医科大学动物实验中心提供,实验动物许可证号:SYXK桂2014-003。饲养环境湿度40%-47%,温度20-25 ℃,光照10 h阴暗14 h。
1.3.2 试剂及仪器 SDS-PAGE蛋白上样缓冲液、PMSF(均为碧云天生物技术有限公司);RIPE 蛋白裂解液(索莱宝科技生物有限公司);Trizol(大连宝生物有限公司);SYBR Green mix(南京诺维赞生物科技有限公司);反转录试剂盒(fermentas公司);Hif-1α抗体、血管内皮生长因子抗体(Affiinity);Tanon-4200全自动化学发光图像分析系统;电泳仪(北京六一生物科技有限公司);半干转膜仪(日本ATTO公司);ABI7500荧光定量PCR仪。
1.4 实验方法
1.4.1 大鼠造模 120只大鼠均制作脊髓夹伤模型。①腹腔注射体积分数10%水合氯醛(3.5 mL/kg),充分麻醉后,行俯卧位,可摸见大鼠背部T9、T10、T11棘突靠近,同时T10棘突在水平方向,以此即可定位T10脊髓节段,以T10为中心消毒;②碘伏消毒后切开皮肤逐层拨开筋膜及棘间肌,逐渐暴露T9-11椎板,小心咬开T9-11椎板,并将T10两侧椎弓根完全咬断,清晰的暴露硬脊膜包裹的脊髓;③以微型血管夹夹闭脊髓,保持夹闭状态20 s制作脊髓夹伤模型,造模结束后可见夹伤处有一大体可见淤血痕迹;④造模成功后,分层缝合肌肉和皮肤。术后给予青霉素腹腔注射,以防感染的发生,减少死亡率。
1.4.2 实验中大鼠死亡率及处理办法 课题正式实验前经过充足的预实验准备,大鼠造模发生的死亡率远远低于课题组要求的1/4死亡率,如造模及干预期间发生大鼠死亡,针对其所在组别进行大鼠造模及干预的补充。
1.4.3 造模后大鼠的电针干预 SD大鼠120只随机分为3组:空白对照组大鼠造模后不予任何干预措施;阿是穴电针组、足阳明胃经电针组大鼠术后第3天开始接受每日1次的电针治疗。阿是穴电针组选择2个阿是穴:位于脊髓全横断处上、下约2个脊髓段(T8-9和T11-12)的椎体棘突之间[10]。足阳明胃经电针组选择双侧伏兔、足三里穴。每个穴位各刺入1枚毫针,进针深度为穿皮后再进针约 2 mm,刺激强度为12-15 mV(C6805-Ⅰ型电针治疗仪),刺激频率为2 Hz,波形选择为疏密波,留针时间为 30 min,每周5次。
1.4.4 指标检测方法
(1)BBB评分:是研究脊髓损伤动物实验广泛采用的评分标准,对于严重脊髓损伤的神经功能研究具有重要的意义[11]。大鼠下肢功能BBB评分:采用双人、双自独立评估方法,对各组大鼠干预后1,2,3,4,5周时间段神经功能变化进行评定。
(2)病理组织检查:分别于干预后1,2,3,4,5周麻醉大鼠,取损伤的脊髓组织标本。常规苏木精-伊红染色,经包埋、切片、脱蜡、水化、染色等步骤后在光学显微镜下观察脊髓损伤后各时间点组织形态学变化。
(3)免疫组织化学染色:脊髓组织标本经包埋、切片、脱蜡、烤片、乙醇浸泡、PBS浸洗、脱水、封固后镜检观察缺氧诱导因子1α、血管内皮生长因子在大鼠损伤脊髓表达及分布位置,以细胞中出现明显黄色或棕黄色颗粒视为阳性着色。染色结果根据免疫组织化学半定量评分标准[12]:高倍镜(×400) 下通过随机截取每张图片3个视野,统计每个视野的阳性细胞数量,观察其阳性细胞表达强度。
(4)实时荧光定量PCR(qRT-PCR):利用qRT-PCR技术检测缺氧诱导因子1α、血管内皮生长因子基因的表达。①将取材的脊髓组织放入研钵中磨碎,再放入无RNA酶的EP管中,加入1 mL Trizol浸泡,混合均匀,置于-20 ℃冰箱冻存,提取组织裂解液移置离心管中予用1 mL枪头反复吹打至裂解液中无明显沉淀,4 ℃ 12
000 r/min离心15 min,吸取上清液1.5 mL置于新的EP管中,加入等体积-20 ℃预冷的异丙醇,混合均匀后置于-20 ℃冰箱沉淀10 min,加入20 μL RNase-free水至完全溶解,紫外线分析测定所抽取RNA的浓度;②qPCR引物设计:缺氧诱导因子1α上游基因:AGA GGA AGC GAA AAA
TGG AAC A,下游基因:AAA GCG
ACA TAG TAG GGG CAC G,退火温度102 ℃;血管内皮生长因子上游基因:CGT CCA
ACT TCT GGG CTC TT,下游基因:CCC CTC
TCC TCT TCC TTC TC,退火温度150 ℃;以反转录的cDNA为模板,用目的基因特异性引物和内参引物扩增待检测的目的基因片段和看家基因,摸索适合qPCR上机的最佳引物退火温度和模板量。
(5)Western blot检测:抽提脊髓组织总蛋白,以Western
blot技术检测缺氧诱导因子1α、血管内皮生长因子蛋白的变化。①将脊髓组织混合部分液氮充分研磨,加入1 mL RIPE裂解液,4 ℃ 12 000 r/min离心10 min,将上清液转移到新的离心管中,分装100 μL/管,将上述样品于蛋白缓冲液中,100 ℃煮沸10 min后12 000 r/min离心 1 min,备用;②根据不同蛋白分子量大小配置不同浓度的胶,等胶凝固后拔出梳子,电泳缓冲液清洗上样孔,将准备好的样品上样,电泳:恒压80 V,30 min后恒压120 V,1 h;③用封闭液室温封闭膜1 h,用新配置的封闭液稀释一抗,其中缺氧诱导因子1α蛋白抗体稀释比1∶400,血管内皮生长因子蛋白抗r体稀释比1∶1 000;4 ℃孵育一抗过夜,用TBST洗膜3次,每次5 min,用封闭液稀释各蛋白一抗对应的二抗,室温下孵育膜1 h,用TBST洗膜3次,每次 5 min,沥干,放入化学发光成像仪中,曝光,拍照记录。
1.5 主要观察指标 ①各组大鼠的BBB评分;②各组大鼠的脊髓病理组织观察;③免疫组织化学染色、qRT-PCR及Western blot检测损伤脊髓缺氧诱导因子1α、血管内皮生长因子的表达。
1.6 统计学分析 采用SPSS 22.0软件进行统计分析,计量资料以x(_)±s表示,多组比较采用F 检验;两两比较采用t检验;计数资料以%表示,用χ2检验;以P < 0.05为差异有显著性意义。