1.1 设计 基因学体外实验。
1.2 时间及地点 实验于2014年4月至2015年6月在广州医科大学药学院药理学系实验室完成。
1.3 材料
实验动物:健康SPF级1-3 d SD乳鼠30只,雌雄不拘,由广东省医学动物实验中心提供。实验中对动物的处理方式符合2009年《Ethical issues in animal experimentation》相关动物伦理学标准依据[8]。
质粒:AdEASY系统(pAd-Track-CMV质粒、含Ad-EASY-1质粒的大肠杆菌BJ5183)购自广州Cyagen公司。
1.4 实验方法
乳鼠心肌细胞的原代分离培养:心肌细胞培养参照文献[9]的方法。取新生1-3 d的SD乳鼠左室心肌组织,利用胰蛋白酶消化法、差速贴壁法分离、纯化心肌细胞,以2×105/孔接种于6孔板。培养至第2天,换用无抗生素含体积分数5%胎牛血清的DMEM培养基和Brdu (0.1 mmol/L)。培养第3天换用不含Brdu的上述无血清培养基,可见95%的心肌细胞搏动,即可进行后续实验。
构建重组Adeno-Brg1:按FuGENE HD使用说明将PacⅠ线性化的Adeno-Brg1转染入HEK293T细胞(由广州医科大学分子医学实验中心提供)中,转染24 h后观察细胞绿色荧光蛋白表达情况。7 d后收集细胞和培养上清,反复冻融以释放病毒颗粒,收集病毒上清液浓缩并检测病毒滴度,经PCR扩增鉴定后得到1011 pfu/mL的Brg1腺病毒。
重组腺病毒转染心肌细胞:心肌细胞培养72 h后,将Adeno-Brg1病毒液与含体积分数10%胎牛血清的DMEM培养基混合均匀,添加至细胞中,置于恒温密闭式培养箱中进行培养,培养条件为体积分数为5%CO2、37 ℃。培养12 h之后更换新鲜含体积分数10%胎牛血清的DMEM培养基继续培养12 h,以进行后续实验。在同等条件下进行空载病毒Adeno-GFP转染,以正常培养的心肌细胞为对照组。
RT-PCR检测心肌细胞Brg1 mRNA表达:转染24 h后,分别提取Adeno-Brg1和空载体Adeno-EGFP转染组心肌细胞的总RNA,经MMLV反转录酶合成cDNA,QuantiTect® SYBR® Green PCR kit在ABI7500荧光定量PCR仪进行目的基因PCR扩增。以GAPDH表达为内参照,Brg1表达量的计算公式:相对含量=2-??Ct,通过PCR扩增循环数和各循环荧光信号强度分析并计算结果。
Western-blot检测心肌细胞Brg1蛋白表达:转染 24 h后,分别收集Adeno-Brg1和空载体Adeno-EGFP转染组的心肌细胞,RIPA 裂解液提取细胞总蛋白,经BCA法定量后煮沸5-10 min,蛋白冷却上样,经SDS-PAGE电泳、转膜、抗体结合、荧光显影并摄图分析。为保证每孔上样等量蛋白,显影后的膜重新封闭,再孵GAPDH一抗做内参照。
H2O2处理腺病毒转染的心肌细胞:重组腺病毒转染心肌细胞24 h后,暴露于37 ℃、100 µmol/L 的H2O2 12 h,随后用PBS漂洗细胞3次,进行后续凋亡标志物和Brg1的检测。
Western-blot检测心肌细胞Brg1蛋白、cleaved- Caspase3表达:转染前后的心肌细胞经H2O2处理后,RIPA提取细胞总蛋白,经蛋白定量后与上样缓冲液充分混合进行电泳,电泳结束将蛋白条带转印至PVDF膜,室温摇床封闭1 h,随后分别孵育Brg1(1∶1 000)、cleaved-Caspase 3(1∶1 000)抗体4 ℃过夜。次日,TBST洗膜后加入辣根过氧化物酶标记山羊抗兔IgG抗体(1∶1 000),室温摇床孵育1 h,经荧光显影检测目的蛋白表达。
Annexin-V/PI双染法检测转染心肌细胞的凋亡:用无酚红、无EDTA的胰酶消化H2O2处理的转染前后的心肌细胞,收集(1-5)×105细胞,加入500 μL的Binding Buffer悬浮细胞及5 μL Annexin V-EGFP混匀后,加入 5 μL Propidium Iodide,混匀,室温避光、反应5-15 min;应用流式细胞仪检测细胞凋亡,计算凋亡百分率。
1.5 主要观察指标 Brg1腺病毒表达载体转染心肌细胞的效率;转染后心肌细胞Brg1表达的情况;H2O2对心肌细胞Brg1表达的影响;Brg1腺病毒载体转染后对H2O2诱导的心肌细胞凋亡的影响。
1.6 统计学分析 数据以x±s表示,利用SPSS 13.0统计软件进行单因素方差分析,两组间比较用LSD-t 检验,P < 0.05为差异有显著性意义。
中国组织工程研究杂志出版内容重点:肾移植;肝移植;移植;心脏移植;组织移植;皮肤移植;皮瓣移植;血管移植;器官移植;组织工程