设计:随机自身对照动物实验。
时间及地点:于2011年4月至2012年3月在兰州大学GLP实验中心及口腔医学院实验室完成。
材料:
实验动物:4-6月龄健康成年新西兰大白兔16只,雌雄不限,体质量2.5-3.0 kg,由兰州大学医学实验中心提供,许可证号:SCXK(甘2009-0004)。实验过程中对动物的处置符合医学伦理学标准。
富血小板血浆复合Bio-Oss/Bio-Gide修复兔牙槽骨缺损实验用材料和试剂:
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材料和试剂
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来源
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Bio-Oss骨粉、Bio-Gide骨膜
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瑞士盖氏制药有限公司
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牛凝血酶
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美国Sigma公司
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无水CaCl2分析纯
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北京天然生物有限公司
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3.8%枸橼酸钠
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中国医药集团试剂公司
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速眠新Ⅱ
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长春农牧大学兽医研究所
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利多卡因
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山东华鲁制药有限公司
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方法:
实验分组及设计:随机选择一侧下颌骨,以富血小板血浆/Bio-Oss/Bio-Gide修复骨缺损,作为实验侧;另外一侧以Bio-Oss/Bio-Gide修复骨缺损,作为对照侧。
建立兔下颌牙槽骨临界骨缺损模型:实验动物饲养观察1周后开始实验,动物称质量,速眠新Ⅱ按0.30 mL/kg的剂量,肌肉注射麻醉。常规消毒铺巾,于下颌第一磨牙近中牙槽嵴顶及颊舌侧局部注射2%利多卡因加1/1 000盐酸肾上腺素,从下颌第一磨牙近中牙槽嵴顶切开黏膜至骨面,切口向近中延伸,长约5 mm,用刮匙钝性分离,暴露下颌第一磨牙牙颈部及近中牙槽嵴顶骨质,用慢速弯机及配套方柱形裂钻去骨,深度为8 mm,颊舌向扩展,注射生理盐水降温,去骨完成后,用微创铤子楔入下颌第一磨牙远中牙槽间隔,向近中及牙合向施力,将其推向去骨区,完整拔除,然后用带球钻的慢速手机进行颊舌向、近远中向适当扩展,并修整缺损上缘,消除尖锐骨嵴,使其平整,手术形成长×宽×高为6 mm×5 mm×8 mm的骨缺损。整个手术过程中严格无菌操作,防止感染。
制备富血小板血浆:在手术麻醉前,从兔耳中动脉处用3.8%枸橼酸钠抗凝剂润湿好的注射器采血8 mL左右,全血与3.8%枸橼酸钠抗凝剂以5∶1的比例混合。将8 mL全血进行二次离心法制备而得0.8 mL左右的富血小板血浆[11],见图1A,B。取20 μL全血以及20 μL富血小板血浆进行血小板计数,计数工作重复3次,求其平均值。本研究所采用的富血小板血浆中的血小板数量为全血中血小板数量的4倍以上[12-13],否则重新采血制备富血小板血浆。
植入成骨材料:实验侧将含有1 000 U/mL牛凝血酶的10%CaCl2溶液按体积比为1∶9加入富血小板血浆中(即 1 mL富血小板血浆+0.5 mL激活剂),摇匀,富血小板血浆被激活,再与Bio-Oss骨粉混合(约0.05 g/术区),形成凝胶状(图1C)。
随机将一侧下颌牙槽骨缺损作为实验组,充填富血小板血浆与Bio-Oss骨粉的复合物(图1D)。覆盖Bio-Gide骨膜(8 mm×8 mm),覆盖范围超出骨缺损边缘2 mm以上,褥式缝合固定骨膜(图1E)。间断缝合牙龈,使创口缝合严密、平整,无膜外露。对照侧:将与同侧富血小板血浆等量的生理盐水与Bio-Oss骨粉混合(约0.05 g/术区)后,同上方法及步骤植入,覆盖Bio-Gide骨膜,缝合。
术后护理:术后给予青霉素肌肉注射预防感染,40×104 U/次,1次/d,连续7 d。由于下颌骨两侧都有创伤, 给予软质饲料,持续1周,视其饮食及创伤恢复情况,恢复正常喂食。
标本采集与处理:于术后2,4,8,12周,采用过量速眠新Ⅱ麻醉剂耳缘静脉注射法处死实验动物,取下颌植骨区包括周围牙齿、牙龈,固定于体积分数10%甲醛溶液中。
主要观察指标:
大体观察:术后密切关注实验动物的精神状态、饮食等活动,观察创口的愈合情况。
X射线片观察:拍摄X射线片,观察牙槽骨缺损区的新骨形成及植骨材料的降解吸收情况。
CBCT观察及骨密度测定:采用口腔CBCT,观察缺损区的修复情况,每个标本选择3个矢状截面,层厚0.8 mm,每个截面的3个区域(牙颈部,根中,根尖),测定每单位面积(1 mm2)牙槽骨缺损修复区的骨密度值,该值表示选中区域灰度与整体图像灰度比值,为相对值[14]。
组织学切片观察:将标本与脱钙液按体积比1∶20浸泡4-7 d,平行牙长轴近远中向取材,脱水,包埋,按0.5 μm层厚切片,常规苏木精-伊红染色。定性分析:新骨形成以及植骨材料的吸收降解情况;定量分析:每个标本获取2张切片,每张切片低倍镜下选择3个视野,计算机采集图像,通过Photoshop图像分析软件测定新骨形成面积占视野总面积的百分比。
统计学分析:采用SAS 9.2统计学软件,对同一时间点时实验侧与对照侧骨密度值、新骨形成占面积百分比结果比较用t 检验,P < 0.05为差异有显著性意义。