1.1 设计 细胞学对比观察实验。
1.2 时间及地点 实验于2019年3至7月在广州中医药大学岭南医学研究中心骨伤科重点实验室完成。
1.3 材料
1.3.1 实验动物 新生24 h的SPF级雌性SD乳鼠10只,由广州中医药大学实验动物中心提供,实验动物质量合格证号:NO.44005800009602,实验动物许可证号:SCXK (粤) 2018-0034,实验单位使用许可证编号:SYXK(粤)2018- 0001。
1.3.2 实验仪器 细胞超净工作台(苏州安泰空气技术有限公司);移液器(Eppendorf,德国);倒置相差显微镜(Leica,德国);细胞培养箱(Thermo Fisher,美国);冷冻离心机(Eppendorf,德国);全自动酶标仪(Thermo Fisher,美国);实时荧光定量PCR仪(Applied Biosystems
Inc,美国);多功能激光扫描成像系统(Amersham,英国)。
1.3.3 实验药物 牛膝甾酮购于南京森贝伽生物科技有限公司,货号:15130-85-5,分子式为C27H44O7,相对分子质量为480.63,可溶于α-MEM,纯度≥98%,5 mg/支,牛膝甾酮结构见图1。
1.3.4 实验试剂 α-MEM培养基(Hyclone,美国);南美血清(Gibco,美国);青链霉素(Gibco,美国);0.25%胰蛋白酶(Gibco,美国);PBS(Gibco,美国);β-甘油磷酸钠(Sigma,美国);抗坏血酸(Sigma,美国);地塞米松(Sigma,美国);碱性磷酸酶活性试剂盒以及碱性磷酸酶染色试剂盒(雷根,北京);茜素红粉剂(Aladdin,上海);CCK8试剂盒(索莱宝,北京);MDC染色试剂盒(雷根,北京);细胞RNA快速提取试剂盒(Takara,日本);两步法荧光定量反转录PCR试剂盒(Takara,日本)。
1.4 方法
1.4.1 SD乳鼠成骨细胞的分离、培养以及鉴定 ①将新生SD乳鼠引颈处死,置于体积分数为75%乙醇中浸泡两三秒;②用剪刀、镊子分离颅骨,需尽量剔除附着的血管以及结缔组织,置于含PBS的培养皿中清洗干净;③用手术剪将颅骨剪成1 mm3大小的小块;④根据组织块的量加入5-10倍的0.25%胰蛋白酶,37 ℃水浴消化20-40 min,每隔5 min震荡1次使得细胞分离,待组织变得稀松,颜色略微发白时离心(1 000
r/min)10 min,舍弃上清液;⑤加入8倍于组织量的0.02%胶原酶,37 ℃水浴消化20 min,每隔5 min震荡1次使得细胞分离,弃去前2次的消化液;⑥取最后2次消化液加入3-5 mL α-MEM培养基,以终止消化;⑦1 000
r/min离心10 min,弃上清液;⑧加入PBS 5 mL冲散细胞,将细胞悬液通过120目不锈钢筛网后再离心1次,弃上清液;⑨重悬细胞,调整浓度为5×108 L-1左右,转移到25 cm2培养瓶中于37 ℃,体积分数为5%CO2环境中培养;⑩取第3代细胞,以每孔104个的密度接种于24孔培养板,500 μL/孔,培养24 h后加成骨诱导培养基(10 mmol/L β-甘油磷酸钠、50 μmol/L抗坏血酸、10-8 mol/L地塞米松)诱导,每2 d换液1次,培养7,21 d采用碱性磷酸酶染色和茜素红染色进行鉴定。
1.4.2 CCK8实验 消化第3代细胞以3 000/孔的密度接种于96孔板,细胞分5组:空白对照组(调零组)、阴性对照组(不加药组)以及1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组设置6个复孔;接种24 h待细胞贴壁后,弃去旧培养基,加入含药培养基,干预24,48 h,弃去旧培养基,加入100 μL混匀好的CCK8溶液(事先将CCK8溶液与培养基按照1∶9的比例混匀);将96孔板在培养箱内避光孵育2 h,用酶标仪在450 nm处测定吸光度值(A)。细胞活力(%)=[A(牛膝甾酮组)-A(空白对照)]/[A(阴性对照组)-A(空白对照组)]×100%。
1.4.3 碱性磷酸酶染色 消化第4代细胞,以3×104/孔的密度接种于24孔板,细胞分4组:0,1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组4个复孔,在培养箱中培养24 h;待细胞贴壁后,弃去孔内旧培养基,加入含药或不含药的新鲜成骨诱导培养基,每2 d换液1次;培养7 d后弃去培养液,PBS清洗3遍,每次5 min,40 g/L多聚甲醛固定30 min,弃去多聚甲醛,PBS清洗3遍,每孔加入300 μL(覆盖细胞)配制好的碱性磷酸酶孵育液,放入培养箱中培养20 min,PBS清洗3遍;加入核固红染色液复染3 min,PBS清洗3遍,扫描并显微镜拍照。
1.4.4 碱性磷酸酶活性检测 消化第4代细胞,以5×104/孔的密度接种于24孔板,细胞分4组:0,1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组4个复孔,在培养箱中培养24 h;待细胞贴壁后,弃去孔内旧培养基,加入含药或不含药的新鲜成骨诱导培养基,每2 d换液1次;培养7,14 d后弃去培养液,使用裂解液裂解细胞后按照碱性磷酸酶活性试剂盒的说明进行操作。
1.4.5 茜素红染色 消化第4代细胞,以1×104/孔的密度接种于24孔板,细胞分4组:0,1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组4个复孔,在培养箱中培养24 h;待细胞贴壁后,弃去孔内旧培养基,加入含药或者不含药的新鲜成骨诱导培养基,每2 d换液1次;培养21 d后弃去培养液,PBS清洗3遍,每次5 min,40 g/L多聚甲醛固定30 min,弃去多聚甲醛,PBS清洗3遍,每孔加入300 μL(覆盖细胞)茜素红染色液,室温下染色10 min,PBS清洗3遍;扫描并显微镜拍照。
1.4.6 MDC染色 消化第4代细胞,以3 000/孔的密度接种于96孔板,细胞分4组:0,1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组6个复孔,在培养箱中培养24 h;待细胞贴壁后,弃去孔内旧培养基,加入含药或不含药的新鲜成骨诱导培养基,培养48 h;按照MDC Stain(×500)∶Stain
buffer=1∶499的比例配制成MDC染色工作液,吸出96孔板中的培养液,加入100 μL MDC染色工作液,37 ℃,体积分数数为5%CO2避光孵育60 min,弃去工作液,加入Wash buffer清洗3遍,荧光显微镜下观察(激发滤光片波长355 nm,阻断滤光片波长512 nm)。
1.4.7 RT-qPCR 消化第4代细胞,以5×104/孔的密度接种于12孔板,细胞分4组:0,1,5,10 mg/L牛膝甾酮组,每组3个复孔,在培养箱中培养24 h;待细胞贴壁后,弃去孔内旧培养基,加入含药或不含药的新鲜成骨诱导培养基;培养24,48 h后弃去培养液,用RNA提取试剂盒提取总RNA,紫外分光光度计测定RNA纯度,每组取 1.0 μg总RNA,分别加入反转录试剂盒的反应体系,在反转录仪中进行反转录生成cDNA后,采用实时荧光定量PCR (RT-qPCR)测定OCN、OPN、OPG、Collagen Ⅰ的表达,采用2-∆∆Ct法并以GAPDH为内参计算上述指标的相对表达量,引物序列见表1。
1.5 主要观察指标 ①成骨细胞活力;②成骨细胞碱性磷酸酶活性;③茜素红染色结果;④MDC染色自噬体数量;⑤成骨分化相关基因表达。
1.6 统计学分析 采用SPSS 19.0软件进行统计学分析。所有数据均呈正态分布,方差齐,组间均数的比较采用成组样本的单因素方差分析法,LSD法检验对组间样本均数进行两两比较,P < 0.05为差异有显著性意义。