1.1 设计 细胞学实验分析。
1.2 时间及地点 实验2016年9月至2017年8月在昆明医科大学第一附属医院云南省骨科研究所完成。
1.3 材料 人脐静脉内皮细胞(中科院上海细胞所),0.25%的乙二胺四乙酸(EDTA)-胰酶、高糖Dulbecco改良的Eagle培养基(DMEM,美国Hyclone公司);四甲基偶氮唑盐(MTT)溶液、H2O2、抗氧化剂白藜芦醇(resveratrol,RES)、Hochest33258(美国Sigma公司),P-选择素、P-选择素糖蛋白配体1、血管性血友病因子、Akt、p-Akt、NF-κB、GSK3β抗体(美国CST公司)。
1.4 实验方法
1.4.1 细胞培养 将人脐静脉内皮细胞分为3组:对照组、H2O2组、H2O2+白藜芦醇组。其中对照组在正常培养液中培养24 h;H2O2组在培养液中加入200 μmol/L H2O2培养 24 h;H2O2+白藜芦醇组先分别予以10,20,30 μmol/L的白藜芦醇预处理2 h,再加入200 μmol/L H2O2培养24 h。
1.4.2 MTT检测 将人脐静脉内皮细胞调细胞浓度至2×107 L-1,接种在96孔板上,每孔100 μL,加入相应浓度的H2O2及白藜芦醇处理。将5 mL MTT溶剂溶解成为25 mg MTT溶液,配制成质量浓度为5 g/L的MTT溶液,在每孔中加入10 μL MTT溶液,在细胞培养箱内培养4 h。然后在每孔加入100 μL甲瓒溶解液,继续培养,直至用普通光学显微镜观察到甲瓒溶解液完全溶解。在酶标仪吸光度570 nm处测量各孔吸光度值(A值)。
1.4.3 Hochest33258染色观察细胞凋亡 将Hoechst 33258染色液加入到细胞中,充分覆盖住待染色的样品。将1 mL染色液加入到六孔板中的每个孔,对于96孔板每个孔需加入100 μL染色液;在37 ℃细胞培养箱中培养细胞10-20 min;用PBS洗细胞2次,每次3-5 min;封固后在荧光显微镜下观察或者直接在荧光显微镜下观察。荧光显微镜下随机选取3个高倍视野,细胞核亮度增强的为阳性表达,计算人脐静脉内皮细胞阳性细胞数和人脐静脉内皮细胞总数。人脐静脉内皮细胞凋亡率(%)=人脐静脉内皮细胞阳性细胞数/人脐静脉内皮细胞总数×100%。
1.4.4 Westernblot检测 将各组人脐静脉内皮细胞用胰酶消化完全、裂解、离心、提取蛋白,采用BCA法测量相关蛋白浓度。取等量蛋白样品,按照每孔30 μg点样,依照目的蛋白相对分子质量不同,使用6%或12%的SDS-聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶电泳90 min。待蛋白完全分离,用半干法转膜60 min,将蛋白转印至PVDF膜。在室温条件下用5%BSA的TBST将PVDF膜封闭60 min。
按相对分子质量不同剪下各目的条带分别加入稀释后的抗体:P-选择素、P-选择素糖蛋白配体1、血管性血友病因子、Akt、p-Akt、NF-κB、GSK3β抗体,在4 ℃条件下孵育过夜。提取条带,洗涤后放入稀释后的二抗管中室温条件下孵育60 min。取出条带,洗膜后的二抗管中室温条件下孵育60 min。取出条带,洗膜后ECL显色,化学发光呈像分析系统进行分析。
1.5 主要观察指标 人脐静脉内皮细胞形态,细胞凋亡比例,P-选择素、P-选择素糖蛋白配体1、血管性血友病因子蛋白及PI3-K/Akt/GSK3β、NF-κB信号通路蛋白表达变化。
1.6 统计学分析 采用SPSS 17.0统计软件进行相关统计学分析。采用x±s来表示计量资料,采用单因素方差分析来进行组间两两比较,以P < 0.05表示差异有显著性意义。
中国组织工程研究杂志出版内容重点:组织构建;骨细胞;软骨细胞;细胞培养;成纤维细胞;血管内皮细胞;骨质疏松;组织工程