Antler regeneration and its proteomics research

doi:10.3969/j.issn.2095-4344.2014.24.026

Abstract

Abstract:

BACKGROUND: Deer antlers are the only known mammalian organs that can periodically regenerate, and antler regeneration is known as a stem cell-based process. The stem cells locate in the potentiated region of pedicle periosteum, and form the basis for deer antler regeneration. Study on the proteome in deer antler and pedicle periosteum is of great importance for revealing biological activity and the mechanism underlying deer antler regeneration.
OBJECTIVE: To summarize research progress in antler regeneration, as well as the major approaches and the status of antler proteomics research.
METHODS: A computer-based online search of PubMed and CNKI databases was performed for acquiring the articles in English and Chinese by using the key words of “deer antler; antler regeneration; antler proteome”. The searched articles are all related with antler regeneration histology and morphology, antler stem cells and proteome studies. Repetitive studies or articles that are unrelated to the search criteria were excluded. A total of 43 papers were included for review.
RESULTS AND CONCLUSION: After preliminary screening in PubMed and CNKI database, 43 articles were finally selected. The literature showed that, based on the histological experiments, deer antlers can periodically regenerate and antler regeneration is a stem cell-based process. The pedicle periosteum is divided into potentiated region and dormant region, which are distinguished by the degree of contacting with the skin. The interactions between potentiated region and its covering skin prompts antler stem cells to develop into a complete antler. And the proteomes in antler and pedicle periosteum play important roles in regulating the regeneration. Getting a complete protein map and using genetic engineering to study the function of unknown proteins can establish significant foundation for understanding unique biological activities and regeneration of deer antler. And it can provide a reference in the regulation effect of related proteins in the regenerative mammalian organs.

中国组织工程研究杂志出版内容重点：组织构建；骨细胞；软骨细胞；细胞培养；成纤维细胞；血管内皮细胞；骨质疏松；组织工程

全文链接：

Key words: stem cells, periosteum, regeneration, proteins, biology

CLC Number:

R318

Dong Zhen, Chu Wen-hui, Zhao Hai-ping, Liu Zhen, Wang Gui-wu, Li Chun-yi. Antler regeneration and its proteomics research[J]. Chinese Journal of Tissue Engineering Research, 2014, 18(24): 3931-3936.

Figures/Tables 1

2.1 纳入文献基本情况文献[1-10]研究了鹿茸周期性再生的过程；文献[11-21]研究了鹿茸基于干细胞再生的依据；文献[22-26]研究了鹿角柄骨膜致敏区与休眠区的发现并证实了鹿茸再生源于角柄骨膜致敏区中的干细胞；文献[27-38]研究了基于凝胶系统的鹿茸蛋白质组学进展；文献[39-43]研究了基于非凝胶电泳的鹿茸蛋白质组学进展。 2.2 鹿茸生物学 2.2.1 鹿茸基于干细胞再生鹿茸再生的整个过程包括生长、骨化、茸皮脱落以及鹿角脱落等[11-12]。与人们所熟知的具有再生功能的物种如蝾螈(基于胚芽的再生)不同的是鹿茸的再生是基于干细胞的割处再生过程[3]，是哺乳类动物中惟一有能力自切、脱落和再生的动物附属器官。鹿茸每年从额前部永久性残桩-角柄上再生，随着年龄增长，角柄逐渐变短。实验证实，鹿茸再生源于覆盖角柄的骨膜[3]。这类细胞就是角柄骨膜细胞。鹿茸每年周期性再生都源于角柄骨膜。随后Li等[3]发现角柄骨膜细胞能表达干细胞标记物CD9抗原。与此同时，3个具有多潜能性的基因即POU结构域的家族成员Oct4，Nanog和Sox2也在其中表达[13-14]。另外发现这种细胞中的端粒酶以及核干细胞因子的表达量也较高[3]。端粒酶能增强细胞的自我更新作用而核干细胞因子具有控制干细胞的增殖作用[15-16]。Li等[17-21]还发现角柄骨膜细胞具有向其他类型细胞分化的多潜能性。 2.2.2 角柄骨膜致敏区与休眠区鹿茸再生组织学基础表明其周期性再生来源于角柄骨膜中的干细胞。但角柄高度如梅花鹿与赤鹿在5 cm左右[22]，那么是整个角柄骨膜都具有再生能力还是只有其中的部分组织承担此任务呢？针对此，Li等[23]通过组织学与形态学研究发现，角柄骨膜根据与皮肤接触的紧密程度有一个比较明显的分界，即远心端大约1/3部分骨膜与皮肤是紧密接触的；而近心端大约2/3部分骨膜与皮肤之间存在大量的疏松结缔组织使得两者没有紧密接触。发现此现象后，Li等[24]进一步进行插膜实验表明茸皮的生长是依赖角柄骨膜的刺激作用的，并且前者可以长出无皮的鹿茸组织，这表明茸皮对于该部分角柄骨膜仅起到引发其生长的作用；而后者则不会生长出鹿茸组织。由此Li等将远心端角柄骨膜与皮肤紧密接触部分称为角柄骨膜致敏区，相应的近心端角柄骨膜与皮肤非紧密接触部分称为角柄骨膜休眠区。另外，Wang等[25]曾表明没有覆盖物的体外组织是不能存活的，但此插膜实验说明鹿茸却是个例外。 Hsueh等[26]研究表明，干细胞的更新，分化与成熟均与其周围的微环境有关。Li等[24]认为鹿角柄皮肤应该为角柄骨膜干细胞提供了这个微环境。目前的实验证明是骨组织相应成分包括角柄骨膜引起的鹿茸再生。骨组织在与其所覆盖的皮肤相互作用后，会被诱导并具有潜在的再生能力[3]。 2.3 鹿茸蛋白质组学研究进展蛋白质组学的研究是生命科学进入后基因组时代的特征。蛋白质组学对于治疗人类疾病，寻找特效药物等解决方案上起着至关重要的作用。再生生物学特别是割处再生是近年来研究的重点，鹿茸是迄今为止所发现的惟一可以割处完全再生的哺乳动物附属器官，以鹿茸为模型研究哺乳动物器官再生机制具有明显优势[1]。而在整个鹿茸再生的过程中，大量具有生物活性的蛋白类物质与小分子多肽类物质承担着重要的生物学作用。所以为了能够全面了解在鹿茸加速生长过程中所涉及的分子机制并找到潜在的信号分子，对于鹿茸蛋白质谱的分析鉴定就显得十分必要了。目前国内外对鹿茸蛋白质组学的研究从分离方法上可分为两类，其一是基于凝胶系统进行蛋白分离(如双向电泳等)；其二是是基于非凝胶系统进行蛋白分离(如在线二维色谱技术等)。 2.3.1 基于凝胶系统的鹿茸蛋白质组学研究赵东[27-28]与刘华淼等[29]利用双向电泳技术分别对梅花鹿二杠茸与梅花鹿茸的不同生长部位进行了蛋白质组的分析。赵东[27]通过整理质谱鉴定结果共得到了177种单一蛋白。其中结构蛋白31种，具有酶活性的蛋白65种，抑制和激活因子5种，信号通道蛋白30种，免疫蛋白3种，与蛋白折叠有关的蛋白13种，与复制转录及翻译有关的蛋白14种，血液蛋白10种，与肿瘤发生有关的蛋白6种(图1)。因为器官再生和肿瘤发生相类似，从结果中可以看出鹿茸中有多个与信号通路和肿瘤发生相关的蛋白，这些蛋白有可能在促使鹿茸具有甚至超过癌症细胞的生长速度的同时又被精确的进行调控生长的整个过程中起到重要作用。丁倩南等[30]同样对不同部位的鹿茸进行了双向电泳最终共找到了18个蛋白差异点，实验结果为区分鉴定鹿茸的级别建立了有效的方法。同时因鹿茸顶端活性较强，其中特有的蛋白点可能是潜在的生物活性物质，具体机制有待进一步验证。 Park等[31]利用双向电泳技术研究赤鹿鹿茸蛋白质组。他将鹿茸尖端与血浆组织进行比对发现两者蛋白质组的匹配度高达43%，这个结果证实了先前的组织学实验即鹿茸组织中确实包含了一个发达的血管系统来为其提供充足的血液以及供给养分(足以支撑其比癌细胞发育还要快速的生长速度)直到鹿茸脱落[32]。并且鹿茸中含有大量的新陈代谢酶类，与基因表达调控有关的蛋白以及信号通路相关蛋白等。其中发现了调控细胞生长的信号通路因子如PKCβ与MAPK1；也发现了一些核受体蛋白如雌激素受体，维生素D3受体以及甲状腺激素受体等。与此同时，鹿茸尖端的蛋白质组一共发现了800多个蛋白点，但质谱鉴定等只得到了130个左右的蛋白，可以看出鹿茸中还含有大量的未知蛋白是目前数据库中所没有收录的，这部分蛋白很有可能是鹿茸所独有的或特异性很强的且具有重要生物活性的蛋白，有必要对这些未知蛋白进一步分析研究。但需注意的是，通过组织提取得到的鹿茸蛋白质组可能有来源于血浆中的蛋白进而干扰实验结果，所以需要考虑血浆蛋白的纯化以还原最真实的鹿茸蛋白质谱。以上是二维凝胶电泳技术在鹿茸中的研究进展，这些研究有助于发现鹿茸中的生物活性物质。而对于探究鹿茸的再生机制需对鹿角柄骨膜(细胞)进行相应的蛋白质组学研究。徐代勋等[33-34]对角柄骨膜休眠区与致敏区的蛋白质组进行比较分析与鉴定，共检测出47个蛋白，其中有6个与再生相关，即PKM2、MAPK1、PEDF、peroxiredoxin 4、Hsp90α、fibulin5，这些蛋白可能参与了鹿茸再生的相关分子调节与信号通路转导。值得注意的是，其中PEDF具有促细胞分化、抑制肿瘤生长、抑制新生血管形成等作用[35]；fibulin 5是血管生成抑制剂[36]，并与原弹性蛋白表达有关，他们在肿瘤所需血管生成中扮演重要角色。由此可知PEDF与fibulin 5可能对鹿茸快速生长而不引发癌变起到调节作用。另外皮肤与角柄骨膜之间存在相互作用而促使角柄骨膜干细胞分化[3]，而Lord等[37]研究发现PEDF在鹿茸真皮的皮脂腺与毛囊等部位中不能检测到，仅能在成纤维细胞中检测到。PEDF存在于角柄骨膜却不存在于皮肤某些关键组织中，那么其是否在两者相互作用中起到信使作用，具体机制有待进一步研究验证。 Li等[11]利用双向电泳分别对鹿生茸区骨膜、角柄骨膜以及面部骨膜三种骨膜细胞的蛋白质组进行分析。结果表明生茸区骨膜细胞中鉴定得到了66种蛋白而角柄骨膜细胞中鉴定得到了98种蛋白。同时对结果进行生物信息学分析发现PI3K/Akt，ERK/MAPK，p38 MAPK等细胞信号通路在鹿茸干细胞增殖时起作用。并找到了胚胎干细胞的特异性标记物POU5F1，SOX2，NANOG和MYC，从而推测鹿茸干细胞可能是一种介于成体干细胞与胚胎干细胞之间的间性干细胞类型。其中值得注意的是Li等[11]与徐代勋等[33]均在角柄骨膜中发现了Hsp90α。而近期清华大学罗永章等研究发现分泌型Hsp90α能促进肿瘤侵袭与转移，且其在血液中含量与肿瘤恶性程度成正相关。该蛋白在细胞外促进了肿瘤细胞的侵袭与转移，并在癌症发生与转移过程中几乎参与了全部活动。该蛋白在肿瘤细胞中的含量达到2%-7%[38]。罗永章认为该蛋白可作为一种稳定的肿瘤标志物并研制出了相应的Hsp90α定量试剂盒用于临床诊断。那么在角柄骨膜中发现相关蛋白到底意味着什么，鹿茸组织与肿瘤到底有怎样的关系还有待进一步的研究。另外罗永章所发现的蛋白是一种分泌型蛋白，在角柄骨膜细胞中该类蛋白是否为分泌型还需要对其培养基中的蛋白进行检测，所以下一步应该找角柄骨膜细胞培养基中是否存在相关蛋白。"

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