2.1   工程化外泌体的制备策略 2.1.1   细胞工程   外泌体由细胞产生，即使微小的细胞变化也能够使外泌体发生巨大的改变。因此，学者们首先对亲本细胞进行改造，细胞工程也成为最常用的工程化外泌体制备方法之一，见图3。"

对亲本细胞进行基因工程是常用的细胞工程技术，即在外泌体生物发生时直接对外泌体进行修饰。ALVAREZ-ERVITI等[9]首次发现神经元特异性狂犬病毒糖蛋白与外泌体溶酶体相关膜蛋白2b(lysosomal-associated membrane protein 2b，Lamp2b)融合的质粒转染的树突状细胞所分泌的外泌体可以靶向性地将siRNA递送到大脑。由此开创了把目的蛋白与Lamp2b融合以定位于外泌体表面的先河。XU等[10]将间充质干细胞结合多肽E7与Lamp2b融合，从而将E7定位于外泌体膜表面，使其具有靶向滑液间充质干细胞的能力，并且能够携带更多药物，诱导更高程度的软骨分化。此外，有研究还构建了一种程序性细胞死亡配体1阳性的间充质干细胞[11]，这种细胞来源的外泌体能在体外将各种激活的免疫细胞调节到免疫抑制状态，并且在炎症组织中的积聚显著增加，展现出令人满意的对自身免疫性疾病的疗效和靶向性。上述研究表明基因工程技术不仅能成功构建出高靶向性的工程化外泌体，还能够显著提高工程化外泌体的载药量，进而实现更精准的治疗。然而，考虑到基因工程的生物安全性问题，仍需更多研究考察其未来应用前景。 细胞的培养条件也会影响外泌体的发生和分泌，进而可能改变外泌体的生物特性。PATTON等[12]在缺氧条件下培养胰腺癌细胞，发现其释放的外泌体数量增加，并且外泌体的大小主要向平均粒径减小的方向发展，为胰腺癌细胞的适应性生长提供了优势条件。由此看来，改变细胞生长条件是一种增加外泌体产量的有效方法，但考虑到其产量增大的程度不足，仍不能成为一种大量生产外泌体的主流方法。 将亲本细胞与药物进行共孵育，是另一种常用的工程化外泌体制备方法。有研究将紫杉醇(paclitaxel，PTX)与小鼠间充质干细胞细胞孵育24 h，然后从经PTX孵育的(间充质干细胞-PTX)和未经PTX孵育的间充质干细胞的培养基中分离外泌体，发现间充质干细胞-PTX衍生的外泌体对胰腺癌有较强的抗增殖活性。这项研究首次展示了如何通过药物与骨髓间充质干细胞直接孵育，在体外通过外泌体包装和输送活性药物[13]。细胞与药物共孵育不需要多余设备，相对来说是比较容易实施的一种细胞工程方法，但缺点是其生产的外泌体载药量总是较低。 2.1.2   外泌体工程   相比于细胞工程的低效率性和高难度性，直接对纯化的天然外泌体进行修饰，可以直接、高效快速地获得大量工程化外泌体，并且减少了细胞培养过程中的不确定性，对工程化外泌体的大量生产具有重要意义。细胞工程与外泌体工程的比较结果见表1。"

外泌体工程，即在适当的条件下，使用特定的技术对纯化的外泌体的表面蛋白或内容物进行修饰，此过程主要分为孵育法、物理法、皂化以及表面修饰，见图4，关于这几种制备策略各自的优缺点比较见表2。"

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药物共孵育：外泌体与药物室温共孵育是一种常用的载药方法。DIDIOT等[14]证明疏水修饰的小干扰RNA在共孵育时有效地装载到外泌体中，携带针对Huntingtin mRNA的小干扰RNA的外泌体能被原代小鼠皮质神经元有效地内化，并促进Huntingtin mRNA和蛋白的剂量依赖性沉默，携带小干扰RNA的外泌体进入大脑的广泛分布和有效性有望推动亨廷顿病和其他神经退行性疾病治疗方法的发展。KIM等[15]将PTX与另一种抗癌药物吲哚青绿(indocyanine green，ICG)共同孵育，获得了双载药的外泌体[(EV/(ICG/PTX)]，EV/(ICG/PTX)表现出了比游离药物或者单载药外泌体更优越的抗癌效果。虽然这种方法简单，但外泌体自身的体积和其表面小的膜孔尺寸限制了药物进入，通常导致载药效率低下[16]。 物理制备法：利用超声、电穿孔及冻融等物理方法，破坏外泌体的膜完整性，可以使药物分子更容易进入外泌体，达到工程化外泌体的目的。例如，DU等[17]利用超声技术将铁死亡诱导剂(erastin，Er)和孟加拉玫瑰(rose bengal，RB)负载到外泌体(Er/Rb@ExosCD47)内，体外体内实验均证明Er/Rb@ExosCD47能促进肿瘤细胞的铁死亡，发挥抗肿瘤作用。 电穿孔法装载亲水类药物，如DNA和RNA时效率很高。MOMEN-HERAVI等[18]通过此种方法将miRNA-155负载到外泌体中，显著增加了原代小鼠肝细胞和miRNA-155基因敲除小鼠肝脏中miRNA-155的水平，并发现当电压为0.13-0.20 kV，外泌体质量浓度为500-1 000 g/L时，负载效率最高。有研究发现电穿孔可以诱导囊泡或siRNA聚集，从而破坏工程化外泌体的结构或降低负载药物的治疗效果[19]，但是在反应中加入海藻糖脉冲介质或螯合剂，如乙二胺四乙酸[20]，这种问题可以得到改善。DUMONTEL等[21]通过反复冻融，将纳米级氧化锌加载至外泌体，在此基础上进一步获得CD20+的外泌体，达到将氧化锌的毒性作用特异性靶向癌细胞的目的。 通过以上物理方法得到的外泌体的大小、形态以及载药效率强烈依赖于制备方法[22]，通过物理方法制备的工程化外泌体，减少了药物以外中间介质的引入，具有更高的生物安全性。 皂化：皂素是一种表面活性剂，常被用作膜渗透剂诱导脂质膜内形成小孔，该过程被称为皂化[23]，利用皂化的作用，能使亲水的非膜透性药物或其他分子进入外泌体，进而辅助外泌体的药物装载[24]。FUHRMANN等[8]使用内皮细胞、肿瘤细胞和干细胞提取外泌体后，通过皂化、电穿孔、挤压和透析将卟啉加载到外泌体中，无论采用何种负载方法，卟啉负载量均较好，但与其他几种方法相比，皂素处理增加了卟啉在外泌体中的载量和细胞摄取。上述研究表明皂素比一般的物理方法能够更大程度增加外泌体的药物装载效率[25]，但是皂素本身是一种毒性物质，具有一定的危险性，当其改造的外泌体应用于体内或者体外实验时应该被洗涤[8，22，25]。 外泌体表面修饰：除了短暂破坏外泌体膜结构之外，还可以通过共价修饰和非共价修饰两种方式对外泌体表面膜蛋白进行修饰，以达到工程化外泌体的目的。 共价修饰主要包括化学偶联，即通过点击化学将配体直接连接到外泌体表面。WANG等[26]首先利用电穿孔的方法，将ICG和PTX加载进入巨噬细胞来源的外泌体中制备出ICG/PTX@EV，然后采用点击化学，通过磺酰叠氮环点击加成反应将RGE多肽偶联至外泌体膜上，制成的ICG/PTX@RGE-EV可以作为ICG/PTX联合治疗胶质瘤的潜在药物传递系统，其在血液循环中的滞留时间延长，并增加在肿瘤中的蓄积，从而促进抗肿瘤作用和降低毒性。点击化学可以在短时间内将多种分子连接到外泌体表面，此外，具有不同特性的多个配体可以同时连接，并且通过调节反应物的比例来精确调节不同配体的定位与密度[27]，生产率高、副产物无害，展现出了优于其他改造策略的更强的可控性、安全性与韧性，具有更广泛的应用价值。 非共价修饰主要是指利用静电、受体-配体及其他方式改变外泌体表面的受体或者蛋白。外泌体表面的Zeta电位为负，即通过静电力，高价阳离子可以结合到带负电荷的外泌体表面，这对利用静电对外泌体表面进行药物加载提供了理论基础[28]。TAMURA等[29]发现阳离子普鲁兰多糖表面修饰的外泌体在肝脏中的蓄积显著增加，促进了肝脏的生物学功能，对肝损伤有较好的治疗作用。然而，某些阳离子纳米材料可能引起细胞毒性，并且通过内吞作用进入细胞，导致溶酶体降解并降低外泌体装载效率[30]。ZHAN等[31]将血液外泌体设计成一种多功能的组合递送系统，将内溶肽L17Eh和磁性分子分别通过静电作用和配体-受体偶联结合到外泌体上，该工程化外泌体显示出改善的内体逃逸和增强的肿瘤聚集能力，从而特异且高效地将包裹的货物运送到肿瘤细胞。此外，叶酸受体是一种存在于细胞膜表面的糖蛋白，在肿瘤细胞中高度表达[32]。因此，叶酸可以作为靶点制备叶酸受体介导的肿瘤细胞靶向外泌体，以增加肿瘤靶向药物的输送[33]。无论是天然受体还是人工添加或者增强的相应受体，都可以通过受体-配体反应实现工程化外泌体的制备。但是受体-配体反应的结合力较弱，此种方式传递的药物分子的黏附性可能不强。 2.2   工程化外泌体的应用及进展   目前工程化外泌体已经被证明在肿瘤、心血管疾病、神经系统及组织再生与修复等领域均有广阔的临床应用前景。随着工程化外泌体的发展，不仅仅局限于单载药系统，更多双载药、甚至三载药系统已经被开发，以便更好地发挥相互促进、增强疗效的作用。不仅如此，多种制备策略联合运用的情况也越来越多，为工程化外泌体的研究进步提供了更多的可能性。总体而言，工程化外泌体均比天然外泌体展现出了更好的治疗效果及靶向性。 2.2.1   肿瘤   由于肿瘤的高复发率和死亡率、耐药性、转移能力和预后差，对人类健康构成了严重威胁，因此对肿瘤的研究一直以来都是经久不衰的热点，在工程化外泌体领域也不例外。外泌体已经被证明可以运输用于肿瘤治疗的抗肿瘤药物。此外，可以通过改变外泌体的内容物和表面物质来提高其临床治疗效果，从而提高靶向性及载药率。例如，LOU等[34]通过基因工程构建了miR-199a修饰的工程化外泌体，发现它可以有效地将miR-199a转移到肝癌细胞，miR-199a修饰的工程化外泌体在体外显著增加了肝癌细胞对阿霉素的敏感性，且在体内也能显著促进阿霉素对肝癌的抗肿瘤作用。来源于肿瘤细胞的外泌体，表面携带着亲本细胞衍生的信号分子，可能能够重新定向母系肿瘤细胞。根据肿瘤细胞外泌体的归巢特性，QIAO等[35]发现肿瘤外泌体可以优先与亲本癌细胞结合，并且延长了阿霉素在肿瘤组织中的滞留时间，为肿瘤的靶向治疗提供了新的方向。外泌体还可以通过影响肿瘤微环境来调节免疫系统功能，从而抑制肿瘤进展。通过电穿孔将siRNA和奥沙利铂负载到骨髓间充质干细胞来源的外泌体，阻断了肿瘤细胞与巨噬细胞的连接，从而抑制了肿瘤微环境中巨噬细胞的极化，此外还增强了奥沙利铂对胰腺导管癌的抗肿瘤作用[36]。 2.2.2   心血管疾病   心血管疾病是除肿瘤以外另一大困扰人类的主要死亡原因。关于心血管疾病的研究有动脉粥样硬化和脑卒中，但大多数集中在缺血性心脏病和心肌梗死。首个将间充质干细胞外泌体应用于心血管疾病的研究发表于2010年，在小鼠心肌缺血/再灌注损伤模型中，间充质干细胞外泌体可以缩小心肌梗死的范围[37]。此后，工程化外泌体的相关研究也越来越多。例如，与常规条件下培养的细胞收集的外泌体相比，从低氧条件下培养的心脏前体细胞外泌体增加了体外培养的心脏内皮细胞的成管能力，减少了体外培养的心脏成纤维细胞中促纤维化基因的表达，并改善了梗死心脏的功能[38]。在另一项研究中，使用电穿孔技术将miRNA-322加载至心球来源的细胞外泌体中，与天然外泌体相比，减少了心肌梗死小鼠模型中的梗死面积和纤维化，并增加了新生血管的形成[39]。外泌体的共给药系统可用于进一步提高外泌体的药物输送效率，比如，WANG等[40]发现缺氧诱导因子1α过表达外泌体在大鼠急性心肌梗死模型中具有抗细胞凋亡和血管生成的作用，而且当使用生物相容性的水凝胶和外泌体偶联以后，工程化外泌体的心脏修复效果得到了增强。 2.2.3   组织再生与修复   作为一种无细胞治疗手段，工程化外泌体在损伤或缺失的组织及器官的再生医学研究中也发挥了不容忽视的作用。ZHA等[41]构建了负载血管内皮生长因子的工程化外泌体，它具有诱导大鼠骨髓间充质干细胞成骨分化和调节血管内皮生长因子基因控制传递的双重功能。工程化外泌体通过特定的连接物与3D打印的多孔骨支架结合，有效地增加了节段性骨缺损的成骨和血管生成。该研究具有类似和同等的血管化骨重建的治疗潜力，工程化外泌体的使用为寻找种子细胞的替代和构建无细胞组织工程方面提供了另一种思路。WOO等[42]发现人脂肪来源的干细胞外泌体通过调节免疫反应，可促进人骨关节炎软骨细胞的增殖和迁移，抑制巨噬细胞向滑膜的浸润，有效地保护软骨免于退变，延缓骨关节炎的进展。在此基础上，LIANG等[43]利用基因工程设计了特异性靶向软骨细胞的外泌体，成功地将miR-140靶向输送到软骨深层的软骨细胞，并严格限制在软骨内，而不会明显扩散到其他组织，同时减缓了大鼠模型骨关节炎的进展。 2.2.4   神经系统疾病   近年来越来越多的证据表明，外泌体在一些脑部疾病的发病机制、诊断和治疗模式中发挥作用，包括缺血性脑卒中、阿尔茨海默病、帕金森病、多发性硬化症和脑肿瘤等。由于外泌体能穿越血脑屏障，作为脑内给药的治疗性药物载体已受到广泛关注。2010年，SUN等[44]首次将姜黄素装载至外泌体中，说明外泌体通过简单的共孵育可以作为疏水性药物的潜在载体。因此，ZHUANG等[45]接下来用这种方法将姜黄素或葫芦素Ⅰ包裹到外泌体中，外源性姜黄素或葫芦素Ⅰ通过局部鼻腔给药进入脑内，从而显著抑制脂多糖激活的小胶质细胞激活和体内肿瘤生长，延缓实验性自身免疫性脑脊髓炎疾病的发展。有研究利用点击化学的方法，对间充质干细胞外泌体表面进行脑内皮细胞靶向肽修饰，证实了该外泌体能够很好的靶向短暂性大脑中动脉闭塞小鼠模型的脑缺血区后，在此基础上加载姜黄素至工程化外泌体，发现能够强烈抑制病变区域的炎症反应以及细胞凋亡[27]。在另一项实验中，研究人员评价了干扰素γ激活的间充质干细胞衍生的外泌体治疗多发性硬化症的效果，发现其能够抑制外周血单个核细胞的增殖，减少促炎细胞因子，并在体外增强Treg细胞的诱导；减少神经炎症和脱髓鞘，并改善慢性实验性自身免疫性脑脊髓炎小鼠模型的功能结局[46]。 2.3   工程化外泌体临床转化的问题与挑战   工程化外泌体通过增强特定特性，能够满足特定的治疗需求，工程化外泌体的工业生产是其临床转化的必由之路。然而，外泌体的工业化生产还处于初级阶段，迫切需要建立大规模生产和分离纯化技术。通常，一个合适的工业化过程需要满足以下要求：高产率、简单、省时和可重复，而现有的外泌体提纯方法都无法满足工业化要求。是否能提供充足的技术设备，是否具有相关技术人员，以及是否具有科学和高效率的质量管理系统等也是亟待解决的首要难点。因此，从产外泌体细胞的选择及特性、规模化生产及分离提纯、成分表征、质量控制、储存稳定性和产品安全性几个方面，讨论工程化外泌体的临床转化存在的问题与挑战。 2.3.1   亲本细胞的选择及特性研究   外泌体的生产可以从经典生物制剂(即抗体和蛋白质生产)和细胞疗法的技术发展中得到启发。亲本细胞的选择和培养构成了外泌体生产的首要关键步骤。目前，对于外泌体生产的最佳技术还未达成共识。需要根据外泌体的活性和组织归巢特性以及潜在的免疫原性和致癌性来选择亲本细胞。此外，遗传稳定性、宿主细胞杂质(如病原体，尤其是病毒)和外泌体产量在亲本细胞的选择过程中起主要作用。常见的产外泌体亲本细胞主要是各种间充质干细胞、肿瘤细胞，树突状细胞、神经前体细胞及内皮细胞等也可用于外泌体生产制造[10，47-49]。 至于亲本细胞的培养，比如亲本细胞的代数及培养血清种类等变化，也是外泌体生产过程需要考虑的关键问题。从早代数细胞培养上清液中获得的外泌体可能与从晚代数细胞培养上清中获得的外泌体在性质上有所不同。目前有3种不同类型的培养基用于获得细胞培养来源的外泌体：含血清培养基、无血清培养基和化学成分替代培养基。与无血清培养相比，含血清培养基更有利于细胞生长和外泌体的产生[50]。 2.3.2   规模化生产及分离提纯   外泌体是异质性囊泡，外泌体的分子组成和生物学功能不仅依赖于细胞类型，培养过程中的微小变化可能会改变外泌体的生物学特性，对外泌体产生深远的影响。使用不同的培养基，得到的工程化外泌体表现出不同的特性，BOST等[51]研究者发现，与传统DMEM培养基相比，使用Opti-MEM培养基从整体上显著增加了工程化外泌体的产量，并且这种产量增加与外泌体的分泌途径无关。大量研究均表明，即使来源于相同的亲本细胞最后得到的外泌体也有可能不同，这都会影响药物的传递效率[52]。 与可以大规模生产的合成载体不同，外泌体的生物产生是一个自然过程，扩大具有治疗效果的外泌体数量是一个巨大的挑战。常用的细胞培养方法包括多层培养瓶、生物反应器以及中空纤维盒。对于小规模的细胞培养，细胞可以在摇瓶、旋转器、滚筒、波浪袋或生物反应器中进行扩增。对于大规模的细胞培养，细胞可以在不锈钢生物反应器(高达20 000 L)、平台摇杆式波袋(高达500 L)或一次性生物反应器(高达2 000 L)中扩增。从生产过程安全性的角度来看，最好使用封闭式系统，然而，这些系统比开放式系统更难监控[53]。许多的证据表明，牛奶来源的外泌体可能是获得大量生物相容性外泌体的有效替代来源。尽管使用牛奶外泌体作为药物载体的可行性研究正在进行中[54]，但从复合牛奶中大规模分离提纯外泌体的技术仍需优化。 经过亲本细胞的大规模培养收集到大量细胞培养液后，外泌体的分离纯化也是一个不容忽视的关键程序。不同的分离提纯方法得到的外泌体产量差距悬殊，外泌体亚群也有所不同。FREITAS等[55]使用不同的技术提取外泌体，差速离心、密度梯度离心和尺寸排阻色谱获得的外泌体显示出相似的蛋白质和糖链图谱，而总体外泌体分离法却分离出不同的外泌体亚群。此外，差速离心、密度梯度离心和尺寸排阻色谱提取的携带肿瘤相关糖唾液酸氨基转移酶的外泌体样本中有相当多的癌症相关蛋白，而总外泌体分离法分离的外泌体中没有检测到这些蛋白质。由此，在转化研究中，最佳分离纯化操作选择也是至关重要的，因为最终得到的外泌体亚群很有可能会影响临床治疗效果。 2.3.3   成分表征   由于外泌体的大小和复杂性，从生产和质量控制的角度，现有技术可能会限制工程化外泌体产品的物理化学、免疫化学或功能的细节表征。目前有限的产品表征能力也对工程化外泌体产品的机制理解有一定影响，并可能类似于其他纳米颗粒产品，使转化过程变得繁琐且具有风险性。 与合成载体相比，外泌体的病毒样大小和复杂性，在一定程度上导致工程化外泌体具有优异的药物递送能力，但与此同时其全面表征和质量保证却面临巨大挑战[53]。通常，外泌体的表征集中在测量颗粒大小和数量，以及检测特定的表面蛋白和货物。透射电子显微镜成像是表征外泌体结构和大小的标准方法。此外，扫描电子显微镜和动态光散射可以对外泌体进行表征。纳米颗粒跟踪分析可以通过跟踪和分析颗粒的布朗运动来计算外泌体的大小和浓度[56]。成像流式细胞术是在传统流式细胞术的基础上发展起来的一种更为有效的检测方法，它结合了流式细胞术和成像功能来采集信号，并通过电荷耦合器件摄像机探测到的图像对其进行量化[57]。一些实验室常用的生化手段(蛋白质免疫印迹法、酶联免疫吸附法、聚合酶链式反应)也常被用来检测工程化外泌体成分。此外，高通量技术，如下一代测序和质谱学[58](蛋白质组学、脂组学和转录组学)，以及冷冻电子显微镜，在评估外泌体的分子组成和结构方面做出了巨大贡献。 合格的体外表征与量化可以预测载药外泌体系统的预期治疗潜力，但是至今仍然缺乏外泌体量化以及分子和物理特征描述的金标准，寻找开发外泌体最佳表征与量化方式是目前研究中不可忽视的一部分。 2.3.4   质量控制   一般来说，生物制品中的活性物质比非生物药品中的活性物质更为复杂。目前，这种复杂程度的物质和构造只能由活器官产生。然而，这样的生产方法本质上面临着一定程度的内在生物变异性，这可能会导致产物的异质性。从工艺设计的角度来看，这种异质性既受表达生物制品的细胞内的生物加工的影响，也受生产生物制品的制造工艺的影响[59]。值得注意的是培养条件，如细胞传代、细胞密度和外泌体收获频率，强烈影响产物质量的各个方面，包括产量、外泌体组成和外泌体生物活性[60]。与用于细胞治疗的哺乳动物细胞不同，哺乳动物细胞的这种偏差至少可以通过表型适应和从头合成来部分补偿，外泌体是相对静态的产品，因此，它们在提取后预计不会发生实质性变化(降解除外)。 在外泌体生产过程中检测和评估产品质量的变化比在蛋白质生产过程中更具挑战性。总体而言，由于微小的变化可能对产品质量和活性产生相当大的影响，外泌体制造过程的稳定性比细胞和抗体生产过程的稳定性要低。尽管存在这一限制，外泌体制造仍可以建立在这些工艺的基础上[61]。但外泌体的大小以及成分和结构的复杂性是独一无二的，因此需要额外的程序对外泌体生产进行把控。这些过程可能包括测量大小和浓度、排除污染物、识别功能标记物和评估载药量以评估每一数量的外泌体的治疗活性等措施，以确保外泌体终产品满足先前确定的关键质量属性[62]。 2.3.5   储存稳定性   最近的研究主要集中在通过评估外泌体的大小、电荷和数量来模拟和储存外泌体的条件(如-80 ℃和4 ℃)，但没有发现很强的相关性[63-64]。已证明在4 ℃下储存会对外泌体结构造成聚集和损坏[65]。此外，尽管外泌体的大小和数量在-80 ℃ 下保持不变，但却造成了一些生物活性的改变[66]。虽然目前建议在-80 ℃下存储，但其高昂的储存和运输的成本使这种方法无法普及。因此学者们提出了其他的替代方法。WU等[67]提出将外泌体保存在GelMA水凝胶中从而减少外泌体聚集，达到保存外泌体的目的，将来是否能够应用于临床还需要更多的结果验证。另一种较常见的保存方法是冷冻干燥，CHAROENVIRIYAKUL等[68]发现冻干的外泌体可以在室温下储存，且能够保持外泌体的囊泡大小和蛋白质含量、结构完整性、生物活性及运送药物分子的药代动力学等关键属性，效果可以与新鲜外泌体媲美，但是冷冻干燥剂的应用是必须的。由此看来比起低温冷冻、凝胶保存，冷冻干燥法有利于外泌体类治疗药物的商业化。 2.3.6   产品安全性   纳米药物可能会导致一些不良免疫反应发生，比如过敏反应、细胞因子释放综合征、生物活性的中和、与内源性蛋白对应物的交叉反应和非急性免疫反应等。因此，对工程化外泌体的安全性和有效性加以证明对研究人员来说是一项挑战[69]。 目前，产品制造商被要求注明药物中所有能够引起药理、免疫或新陈代谢作用的物质，并且在最终配方中使用的非活性成分(称为赋形剂)也应予以申报。国际胞外囊泡协会声明，如果整个治疗效果可以归因于外泌体的负载药物，而不是载药外泌体系统中的外泌体，则外泌体可以被视为赋形剂。在这种情况下，仅需要外泌体的安全性描述，而不需要描述其作用方式或机制。如果安全和质量标准均充分达到要求，并且提供了可信的作用方式和机制，则可以允许进行Ⅰ期临床试验[70]。 免疫排斥是临床转化中的首要关注问题，自体外泌体产品能够较好地规避这种风险。虽然已有一些制药公司开发了商业化自体外泌体产品，例如Brianstorm公司的自体骨髓间充质干细胞来源的外泌体[71]，但目前主要的产业结构仍然是小规模的学术研究，而不是大规模的制药生产，其生产成本也使很多公司望而却步。并且，生产自体外泌体的时间和临床首次治疗的时间一般很难匹配。在特定患者外泌体制造和质控这段时间内，患者的病情可能会恶化，因此缩短个体化外泌体产品的临床转化时间是亟待解决的首要问题。DONG等[72]的研究表明，同种和异种来源的外泌体都不造成免疫排斥，为异种外泌体的应用提供了可能性。 同种异体外泌体，甚至异种外泌体要转化为安全有效的临床治疗产品，需要通过持续监测来严格把控亲本细胞的选择、免疫学和致癌效应的评估以及病毒污染的风险等问题。监测方法的选择，特别是它们的灵敏度，是确定外泌体药物载体临床转化所需时间的关键挑战。虽然已有多种外泌体产品被测试，但每个实验室和公司的测试方法却并不统一[73]，监管机构至今尚未发布关于如何测试这些外泌体的安全性和有效性的指导意见，因此需要对现有的测试方法进行改进或者寻找新方法对工程化外泌体的安全性和有效性进行证明，争取工程化外泌体产业在不久的将来能够得到统一规制，为进入临床应用阶段迈出坚实一步。"