1.1 设计 材料的制备与表征,体外细胞学实验,随机分组动物实验。
1.2 时间及地点 实验于2022年6月至 2024年6月在南京医科大学附属南京医院动物实验中心完成。
1.3 材料
1.3.1 主要材料与试剂 Bio-Gide、Bio-Oss(Geistlich-Pharma,瑞士);α-MEM 培养基、青霉素-链霉素溶液、胎牛血清、0.25%胰酶-EDTA(Gibco,美国);CCK-8 试剂盒(Dojindo,日本);碱性磷酸酶染色试剂盒(碧云天生物技术,中国);EDTA 脱钙溶液(Servicebio,中国);苏木精和伊红(Beyotime,中国);Masson三色染色液(Solarbio,中国)。
1.3.2 主要仪器 倒置光学显微镜(Carl Zeiss,德国);扫描电子显微镜(Carl Zeiss,德国);VMR小动物专用吸入麻醉机(MATRX,美国);数字化口腔X射线成像仪 (Handy Dentist,中国);Micro-CT 扫描仪(SCANCO,瑞士);生物力学拉伸扭转疲劳仪(Instron E3000,Instron Console,Wave Matrix and Blue Hill System,MA,美国);细胞培养箱(Thermo Fisher ,美国);石蜡包埋机(Leica,德国);石蜡切片机(Leica,德国);恒温干燥箱(实贝,中国);小型骨科环钻(烁蒂,中国);无菌细胞超净台(Thermo Fisher ,美国);生物安全柜(Thermo Fisher ,美国);离心机(Thermo Fisher ,美国);冷冻干燥机(永合创信,中国);水浴锅(数显,中国)。
1.3.3 实验动物 SPF级雄性SD大鼠18只,10周龄,体质量260-280 g,购自北京斯贝福生物技术有限公司,许可证号:SYXK(京)2024-0010。大鼠在水和食物供应充足、温度25 ℃、湿度50%-60%的环境下饲养。实验方案已通过南京医科大学附属南京医院动物伦理委员会批准 (审批号:DWSY-22102228)。实验过程遵循了国际兽医学编辑协会《关于动物伦理与福利的作者指南共识》和本地及国家法规。
1.4 实验方法
1.4.1 新型胶原膜的制备 6只长白猪(8-10月龄,体质量90-100 kg)膀胱购自南京阳光养殖中心。采用片皮机除去猪膀胱的浆膜层和部分肌肉层,进行以下处理:加入到2%胰蛋白酶溶液(膀胱质量与胰蛋白酶溶液体积的比例为1 g∶10 mL)中于37 ℃浸泡4 h,加入到含2% Tween-20和3%乙酰半胱氨酸混合溶液(膀胱质量与混合溶液体积的比例为1 g∶10 mL)中于25 ℃浸泡16 h,加入到含有2%多糖酶、0.5%DNA酶、0.5%RNA酶和2%木瓜蛋白酶混合酶溶液(膀胱质量与混合溶液体积的比例为1 g∶10 mL)中于37 ℃处理12 h,采用超临界二氧化碳清洗2 h
得到胶原膜,清洗压力为25 MPa、温度为40 ℃、CO2流量为5 L/min。冷冻干燥和辐照灭菌(10-15 kGy)后得到胶原膜成品,它与Bio-Gide膜类似,同样分致密层和多孔层。
1.4.2 胶原膜的表面形貌观察 将Bio-Gide膜与新型胶原膜处理成1 cm×1 cm大小,使用倒置光学显微镜进行观察。两胶原膜经喷涂金属涂层处理后,通过扫描电镜(25 kV)观察致密层和多孔层的表面结构;观察多孔层时,随机取多个视野,采用图像处理软件Image-Pro Plus 6.0(Media Cybernetics公司,美国)计算孔隙率。
1.4.3 胶原膜的吸水率检测 将Bio-Gide膜与新型胶原膜切成12 mm×8 mm大小的长方形。在干燥状态下称量每种膜的质量(m0),然后浸入生理盐水中,置于4 ℃冰箱中保存。24 h后,用干净的纱布吸去膜表面的生理盐水,称量质量(m1),计算吸水率。
吸水率= (m1-m0)/m0×100%
1.4.4 胶原膜的降解率检测 将Bio-Gide膜与新型胶原膜处理为同等规格大小,干燥状态下称量每种膜的质量(m0),然后分别置于35 mm×12 mm无菌培养皿中,分别加入5 mL PBS,每种膜3份样本。每隔1周,用干净的纱布吸去膜表面的生理盐水,称量膜质量(mx),计算降解率。
降解率= (m0-mx)/m0×100%
1.4.5 胶原膜的生物力学测试 将Bio-Gide膜与新型胶原膜切成30 mm×10 mm大小的长方形,通过电子式疲劳测试仪器进行拉伸测试,初始拉伸长度均为8 mm,采用速率控制方式进行,加载速率为5 mm/min,记录载荷-位移曲线,测量弹性模量和膜断裂时的极限载荷。
1.4.6 胶原膜对大鼠骨髓间充质干细胞增殖与分化的影响
大鼠骨髓间充质干细胞的培养:大鼠骨髓间充干细胞(北京斯贝福生物技术有限公司)的培养基为含体积分数10%胎牛血清、1%青霉素/链霉素的α-MEM培养基,置于CO2培养箱中于37 ℃下培养,按 1∶3 比例传代。选择第3-5代细胞进行后续实验。
CCK-8法检测细胞增殖:①膜的预处理[30]:将Bio-Gide膜与新型胶原膜切成合适大小,多孔层朝上,置于96孔板中,1%PBS冲洗3次,吸弃冲洗液;体积分数75%乙醇浸泡30 min,1%PBS冲洗3次,每次5 min;α-MEM培养基浸泡过夜,吸弃液体。②实验分组与处理:消化大鼠骨髓间充干细胞,吹散成单层细胞悬液后接种于96孔板中,分别与Bio-Gide膜、新型胶原膜共培养,以单独培养的细胞为对照,每组设置3个平行孔,细胞密度为5×103/孔,加入含体积分数10%胎牛血清、1%青霉素和链霉素的α-MEM培养基,置于CO2培养箱于37 ℃下孵育,隔天换液。培养24,48,72 h后,每孔加入CCK-8试剂后置于CO2培养箱于37 ℃培养1h,取每孔上清液置入新的96孔板中,使用Multiskan GO酶标仪在450 nm波长处测量吸光度(A)值,计算细胞增殖率。空白组仅加入含体积分数10%胎牛血清、1%青霉素/链霉素的α-MEM培养基(无细胞)。
细胞增殖率 (%) = (实验组A值-空白组A值) / (对照组A值-空白组A值)×100%
成骨诱导后碱性磷酸酶染色:将Bio-Gide膜与新型胶原膜切成合适大小,多孔层朝上,置于6孔板中,预处理同上。将大鼠骨髓间充质干细胞悬液接种于6孔板中,分别与Bio-Gide膜、新型胶原膜共培养,以单独培养的细胞为对照,细胞密度为3×105/孔,加入成骨诱导培养基(含体积分数10%胎牛血清、1%青霉素和链霉素、20 mmol/L β-甘油磷酸盐、50 mg/L抗坏血酸、0.1 mmol/L 地塞米松的α-MEM培养基)。成骨诱导培养7 d后,加入碱性磷酸酶染色液室温避光孵育30 min,PBS清洗后至光学显微镜下观察并拍照,采用Image-Pro Plus 6.0软件计算染色强度。
1.4.7 胶原膜修复颅骨缺损实验
大鼠颅骨缺损模型的建立:将Bio-Gide膜与新型胶原膜经辐照灭菌后裁剪成5 mm×5 mm大小的正方形,备用。SD大鼠经适应性饲养3 d后开始实验。腹膜内注射2%戊巴比妥钠2 mL/kg麻醉大鼠,手术区域进行备皮、碘伏消毒,沿颅中缝做一长约2 cm的纵行切口,分离至骨面,使用直径5 mm的牙科环形钻在颅骨矢状缝左右两侧各制作1个直径为 5 mm的圆形全层骨缺损,保持硬脑膜的完整性,36个缺损部位随机分6组干预:对照组(n=6)缺损处不植入任何材料;Bio-Oss组(n=6)缺损处填充Bio-Oss骨粉;Bio-Gide组(n=6)缺损处覆盖Bio-Gide膜,周围用丝线与软组织固定;新型胶原膜组(n=6)缺损处覆盖新型胶原膜,周围用丝线与软组织固定;Bio-Oss+Bio-Gide组(n=6)缺损处填充Bio-Oss骨粉后覆盖Bio-Gide膜,多孔层朝向骨粉,周围用丝线与软组织固定;Bio-Oss+新型胶原膜组(n=6)缺损处填入Bio-Oss骨粉后再覆盖新型胶原膜,多孔层朝向骨粉,周围用丝线与软组织固定(图1)。逐层缝合切口。
大鼠颅骨取材和Micro-CT分析:术后12周,腹腔注射过量戊巴比妥钠处死大鼠,获取大鼠颅骨标本及主要脏器(心、肺、脾、肝、肾),40 g/L多聚甲醛固定颅骨标本48 h,进行Micro-CT扫描,扫描参数为:70 kV电压、分辨率为18.38 μm,通过多平面重组获得三维图像,确定骨体积分数与骨表面积和骨体积比值。
组织学观察:颅骨标本经EDTA脱钙处理12周,石蜡包埋固定,将包埋后的蜡块按5 μm厚度切片,进行苏木精-伊红染色与Masson染色,倒置光学显微镜下观察。40 g/L多聚甲醛固定心、肺、脾、肝、肾标本24 h,进行苏木精-伊红染色,检测新型胶原膜的器官毒性。
1.5 主要观察指标 新型胶原膜与Bio-Gide胶原膜的表面形貌、吸水率、孔隙率、降解率与拉伸弹性模量、极限载荷,两种膜对骨髓间充质干细胞增殖和分化的影响;两种膜修复大鼠颅骨缺损的效果。
1.6 统计学分析 数据以x±s表示,体外实验基于3个独立重复的结果,动物实验数据均基于6个独立标本的结果。采用SPSS 26.0软件对数据进行统计学处理,采用GraphPad Prism 8.4.0软件完成统计图表的绘制。两组或多组计量资料采用t检验或方差分析,两组间均数比较采用两独立样本的t检验,多个样本间进行两两比较采用LSD-t检验,P < 0.05为差异有显著性意义。该文统计学方法已经南京鼓楼医院生物统计学专家审核。