骨髓干细胞
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图1｜大鼠骨髓间充质干细胞的鉴定
图2｜大鼠施万细胞的鉴定
结果：BMSCs呈现典型的贴壁、成纤维细胞状，见图1A；同时成功诱导细胞三系分化，见图1B。施万细胞的典型细胞形态，见图2A；S100蛋白免疫荧光染色可见大多数施万细胞表达S100蛋白，见图2B。
图3｜大鼠骨髓间充质干细胞(BMSCs)来源细胞外囊泡的鉴定
结果：EVs的鉴定结果见图3。图3A箭头所指即为EVs。为了显示EVs尺寸的异质性，该研究展示了小于100 nm和大于150 nm的EVs。EVs的纳米颗粒示踪分析结果见图3B，EVs-nor的粒径范围为(124.5±48.6) nm，EVs-prp的粒径范围为(130.6±55.8) nm。图3C可见EVs-nor和EVs-prp均表达有EVs的标志性蛋白TSG-101和CD63。
图4｜骨髓间充质干细胞(BMSCs)来源细胞外囊泡对施万细胞重编程的效应
结果：对这些重编程特点的分析可以了解施万细胞的重编程状态。EdU细胞增殖实验结果见图4A，B。EVs-prp组EdU阳性细胞核比例显著高于PBS组和EVs-nor组(P < 0.01)，且EVs-nor和PBS组之间没有显著差异，表明EVs-prp能够显著刺激施万细胞增殖。转录因子c-Jun的表达分析结果显示，EVs-prp能够刺激施万细胞 c-Jun表达，其基因和蛋白表达量显著高于PBS组(P < 0.05)，同时基因表达量显著高于EVs-nor组(P < 0.05)，见图4C，D。髓鞘化相关基因Krox20的 qPCR检测结果显示，与PBS组相比，EVs-nor和EVs-prp组Krox20表达均出现显著下调(EVs-nor，P < 0.05；EVs-prp，P < 0.01)，EVs-nor和EVs-prp组之间无显著性差异；GDNF基因表达在EVs-prp组中上调，显著高于PBS组和EVs-nor组(PBS，P < 0.05；EVs-nor，P < 0.01)，PBS组和EVs-nor组之间没有显著差异，见图4E。最后，施万细胞形态分析结果显示，EVs-prp组细胞的圆度显著低于PBS和EVs-nor组(PBS，P < 0.01；EVs-nor，P < 0.01)，且细胞长度/√面积值显著高于PBS和EVs-nor组(PBS，P < 0.000 1；EVs-nor，P < 0.000 1)，同时这2个值在PBS组和EVs-nor组之间没有显著差异，见图4F，G。这表明EVs-prp组细胞形态显著伸长。
图6｜周围神经损伤修复的组织学评估结果
结果：神经纤维密度分析结果显示，BMSCs+PRP组神经纤维密度显著高于其他3组(空白组，P < 0.01；PRP组，P < 0.01；BMSCs组，P < 0.05)，其他3组之间没有显著差异，见图6A。
腓肠肌湿质量分析结果显示，BMSCs+PRP组腓肠肌恢复情况最好，肌肉湿质量比显著高于其他3组(空白组，P < 0.001；PRP组，P < 0.001；BMSCs组，P < 0.05)，其他3组之间没有显著差异，见图6B。