2.1   间充质干细胞在临床应用中出现的问题   人间充质干细胞是一类来自人体的具有多向分化潜能的成体干细胞，具有易获取、自我增殖能力强、多向分化潜能、免疫原性低等特点[6]，被认为是再生医学材料的理想来源，在医学研究及应用中具有广阔的应用前景[7]。而在实际Ⅲ期临床试验中干细胞的疗效却差强人意[8]，原因之一在于细胞疗法所需的细胞数量较大而人间充质干细胞在体内的数量较少，难以获取足够的细胞量支持治疗；在正常成年人骨髓组织中，骨髓间充质干细胞占有核细胞总数的0.001%-0.1%[9]，且随年龄的增加其比例逐渐减少。在以往研究中，成功的干细胞疗法需要至少1×106-1×108个细胞，单个细胞需经过27次倍增后才能达到这个细胞数量[10]。根据疾病、给药途径、给药频率和患者体质量甚至需要更大的需求量，显然体内分离提取的原代人间充质干细胞数量不足以供应临床治疗，因此，想要获得足够治疗量的细胞，人间充质干细胞需要在体外进行连续传代扩增。在以往研究中关于间充质干细胞体外培养的方法及技术变化见图3。"

不同来源人间充质干细胞在体外培养中的传代能力存在显著差异，主要受组织来源、供者年龄、培养条件等因素影响。在同种条件下培养3种不同来源的间充质干细胞：人脐带来源间充质干细胞(human umbilical cord mesenchymal stem cells，hUC-MSCs)、骨髓来源间充质干细胞(human bone marrow mesenchymal stem cells，hBM-MSCs)及脂肪来源间充质干细胞(adipose tissue mesenchymal stem cells，AT-MSCs)，同一代次下，人脐带来源间充质干细胞的增殖能力较骨髓来源间充质干细胞更强，体外传代次数更多，人脐带来源间充质干细胞可达37代，而骨髓来源间充质干细胞只能传至17代就失去干细胞特性[11]。不同来源的干细胞分化潜能也各不相同，脂肪来源间充质干细胞更倾向于向脂肪细胞分化，骨髓来源间充质干细胞在成骨分化上明显优于脂肪来源间充质干细胞[12]。而过度传代后细胞出现不可逆改变，包括细胞形态学改变、增殖活性降低、免疫原性改变、致瘤性增加、迁移和归巢能力下降等，这些改变会使人间充质干细胞的功能特性减退并诱发细胞不可逆改变甚至癌变，从而影响间充质干细胞在临床使用中的疗效(图4)。"

2.1.1   细胞形态学改变   人间充质干细胞的典型形态是贴壁生长的长梭形细胞，随着培养时间的延长和传代次数的增加，人间充质干细胞的形态逐渐出现不均一性，细胞从细纺锤形转变为扁平肥大，边界模糊[13]，并逐渐失去贴壁能力，细胞核缩小、呈现颗粒状细胞质，肌动蛋白纤维增加，迁移能力减弱[14]，细胞核中异染色质结构呈点状聚集，称为“衰老相关异染色质灶”[15]。以上细胞形态改变出现均表示细胞逐渐进入衰老阶段。 2.1.2   增殖分化能力下降   人间充质干细胞拥有极高的自我更新能力，理论上可以自我复制到任何符合实验目的的细胞量。但是，在实际体外传代培养过程中人间充质干细胞却无法达到理论上的细胞体量，其原因就在于体外传代过程中人间充质干细胞发生衰老而逐渐失去增殖能力。多项研究表明人间充质干细胞的寿命范围为30-40个体外群体倍增[16]，不同组织来源及不同年龄供者来源的人间充质干细胞传代次数也不同。在体外的生长曲线一般呈“滞缓-对数生长-平台”模式，平台期过后细胞增殖能力减退，与传代次数呈反比，S期细胞明显减少，G1期细胞阻滞[17]。 人间充质干细胞具有显著的成骨、成软骨和成脂潜力，在传代后期其分化潜能也逐渐减退，且存在分化偏移现象，即衰老人间充质干细胞的成骨分化能力下降程度远大于成脂分化能力，部分衰老细胞仍保有一定的成脂能力。传代后期间充质干细胞中的成骨标志物，如碱性磷酸酶活性和骨钙素表达下降[17]，参与细胞激活成骨分化的转录因子Runt相关转录因子2和Osterix表达也下降；同时，参与调节成脂分化的CCAAT增强子结合蛋白和过氧化物酶体增殖物激活受体γ也出现表达失衡，并表现出成脂分化潜能降低[18]。由以上研究可知长期培养会使间充质干细胞逐渐丧失祖细胞特征，其在体外发挥疾病治疗的功能也随之减退。 2.1.3   迁移和归巢能力下降   人间充质干细胞的组织修复作用很大程度上依赖于移植后细胞的迁移和归巢能力，人间充质干细胞迁移至受损部位通过分化及旁分泌发挥治疗作用[19]。在体外培养时发现，传代次数较多的间充质干细胞的迁移和侵袭能力逐渐减弱。细胞形态上，老化的间充质干细胞中局部细胞骨架改变、伪足形成减少[20]，细胞迁移运动能力减弱；基因层面上，编码细胞骨架和肌动蛋白的特定基因亚群(如整合素、α-辅肌动蛋白等)的mRNA表达下降；同时，参与定向迁移的趋化因子mRNA下调，如基质细胞衍生因子1(stromal cell-derived factor 1，SDF-1)及其受体(CXC chemokine receptor 4，CXCR4)，导致人间充质干细胞受趋化因子作用而发生迁移的能力也减弱[21]。人间充质干细胞的迁移和归巢能力降低，导致细胞不能迁移至受损组织部位，从而难以发挥治疗作用。 2.1.4   细胞代谢障碍   线粒体作为细胞的能量中心，其功能变化与间充质干细胞的命运紧密相连。在体外培养期间，线粒体体积随细胞衰老肥大而增大，内膜皱褶减少，导致电子传递链复合体空间排列紊乱。传代后期间充质干细胞内ATP含量明显低于原代间充质干细胞，而活性氧水平较原代细胞增加，表明长期培养后细胞线粒体功能受损导致氧化应激水平升高。与年轻干细胞相比，多次传代后间充质干细胞的基础有氧呼吸能力、最大有氧呼吸能力、有氧呼吸储备和ATP产生量均明显降低，活性氧等有害物质沉积引起DNA损伤导致细胞衰老及死亡。 2.1.5   分泌衰老相关分泌表型   间充质干细胞在长期培养后细胞分泌表型发生改变，高产出某些分泌物，包括白细胞介素1α、白细胞介素1β、白细胞介素6、白细胞介素8、转化生长因子β、表皮生长因子、成纤维细胞生长因子2、肝细胞生长因子、胰岛素样生长因子结合蛋白7，趋化因子CCL1/3和基质金属蛋白酶等，统称为衰老相关分泌表型因子。这类因子通过与细胞表面受体结合，激活信号转导通路，从而影响细胞的生长、分化和功能[22]。阻断衰老相关分泌表型相关的反馈环路，例如，耗尽白细胞介素6受体、白细胞介素8受体或胰岛素样生长因子结合蛋白7可以延缓衰老，甚至阻止衰老进程[23]。除了自我调节之外，衰老相关分泌表型因子还倾向于通过旁分泌机制影响邻近细胞以加速衰老。例如，衰老人间充质干细胞分泌的衰老相关分泌表型因子可以通过限制邻近年轻造血干细胞的增殖速度来诱导提前衰老[24]。 2.2   长期体外传代导致人间充质干细胞改变的可能机制   在长期传代过程中，受外界环境物理化学因素的影响，细胞内部发生多种改变，如基因组学改变、蛋白表达差异、细胞信号通路改变及线粒体功能失调等，以上细胞内复杂的改变共同影响人间充质干细胞的寿命及功能。 2.2.1   遗传物质损伤   在间充质干细胞体外培养过程中，外界物理和化学环境的刺激会导致细胞内DNA损伤，随着受损遗传物质的不断积累，细胞逐渐走向衰老及死亡。此外，随着细胞的每一次复制分裂，染色体末端的端粒逐渐缩短，每传2代端粒缩短约为100 bp[15]，直至端粒缩短到临界长度，细胞周期停滞并停止分裂。此外，在表观遗传学方面，长期传代的人间充质干细胞也出现不可逆改变，DNA甲基化促进细胞和组织中的转录组改变并影响组蛋白修饰模式，以调节衰老过程中的基因表达。组蛋白甲基化和组蛋白乙酰化也在表观遗传改变中起着至关重要的作用。衰老间充质干细胞在特定CpG位点显示出高度一致的衰老相关修饰，甲基化水平整体升高。促衰老miRNA(如miR-34a、miR-145)上调，靶向抑制细胞周期调控相关蛋白，导致细胞周期阻滞[25]。 2.2.2   蛋白质稳态丧失   蛋白质是构成细胞生物体的基础，维持蛋白质系统的相对稳定对细胞发挥正常功能至关重要。一旦蛋白质稳态失衡，过量无活性或者活性异常的蛋白质在细胞中堆积，从而导致细胞无法发挥正常功能。其中，自噬是一种经过严格调控的非特异性降解途径，通过降解蛋白质大分子和功能失调的细胞器(如线粒体和溶酶体)来维持细胞稳态。长期培养后间充质干细胞的自噬功能下降，导致细胞内大量异常及损伤的细胞器沉积、氧化应激平衡失调，最终引发细胞衰老和凋亡[26]。 2.2.3   细胞内信号通路和转录因子表达改变   当人间充质干细胞留存在体内时，细胞长时间处于静止期，只有通过适当信号激活细胞才开始发挥再生和修复功能，这种静止状态能保护干细胞免受氧化应激造成的损伤。而在间充质干细胞体外培养时，外界刺激导致多种分子途径激活，如肿瘤抑制剂p53信号通路相关基因在间充质干细胞长期培养后表达上调，导致细胞衰老及凋亡[27]。体外长期培养诱导p21WAF1/CIP1和p16INK4A表达增加，引起细胞周期阻滞，细胞逐渐走向衰老[28]，信号转导和转录活化因子3表达也异常升高，导致神经干细胞终末分化为神经胶质细胞，而不是神经元[29]。以上这些信号通路的改变影响细胞的增殖、分化及衰老[30-31]。 2.2.4   线粒体功能障碍引起细胞代谢紊乱   线粒体是细胞的“能量工厂”和代谢调控中心，其功能稳定对维持细胞活力、组织稳态及机体健康至关重要。人间充质干细胞在体外传代培养过程中可以观察到随传代次数的增加线粒体融合增加、分裂减少，同时细胞内ATP产生减少、活性氧堆积，导致细胞代谢紊乱，抗氧化能力降低。堆积的活性氧会损伤细胞内的蛋白质、脂质和DNA，进而激活p53和pRb信号通路，导致细胞周期停滞，引起间充质干细胞体外衰老[32]，主要与衰老标志物的表达增加有关，包括β-半乳糖苷酶、p16INK4a和p21[33]。线粒体功能障碍还会导致细胞慢性炎症，激活Wnt/β-连环蛋白通路以抑制线粒体自噬，从而使大量受损的线粒体在间充质干细胞中积累[34]，以上因素形成一个正反馈回路加剧线粒体损伤和细胞衰老。此外，线粒体功能障碍与多种线粒体损伤引起的代谢紊乱还会使NAD+/NADH比率失衡，影响细胞的能量状态，导致生物系统功能障碍，从而使体外培养的间充质干细胞无法达到预期的治疗效果[35-36]。 2.3   逆转干细胞衰老的手段   间充质干细胞在体外培养时发生的形态和功能改变均会影响它在实际临床治疗中的作用效果，因此为提高间充质干细胞的培养效率，增强干细胞的治疗效果，需进一步探索优化干细胞的体外培养方案。目前主要从培养基、培养条件、基因与表观遗传调控、质量控制等方面提出改善间充质干细胞体外存活的方案，以期使间充质干细胞在体外获得更强的生存能力并获得更好的治疗效果。 2.3.1   细胞基因工程   细胞功能改变的原因很大一部分归因于遗传物质改变，通过对细胞的基因进行改造，在分子水平上调节间充质干细胞，是改善干细胞功能退化的重要方法。按不同干预层面可分为两大方向：其一是通过基因编辑技术将某类基因插入或从原有序列中敲除，从而使间充质干细胞获得更强的增殖分化能力及免疫调节能力；其二是通过表观遗传学间接操控细胞遗传学表达，通过DNA甲基化及组蛋白修饰等方式对间充质干细胞的非编码序列进行微观调控。基因工程能使细胞获得稳定的基因表达，从而在长期传代中保持长久恒定的生物特性。 基因修饰根据干预目的又可大致分为3个方向，即提高细胞增殖分化相关基因、调整细胞周期相关基因以及为使细胞获得某项特定分化能力导入特定基因从而靶向治疗相关疾病。在2006年，由日本科学家山中弥生团队提出了一项开创性研究，即通过引入4个特定的转录因子Oct4、Sox2、Klf4和c-Myc，即Yamanaka因子，将已终末分化的体细胞重编程为诱导多能干细胞。这一研究是干细胞领域的里程碑，推动了再生医学的发展[37]。后续研究又从诱导多能干细胞中诱导出功能性间充质干细胞，相比传统骨髓、脂肪来源间充质干细胞拥有更强的增殖能力、更高水平的再生基因表达及更低的免疫原性，在促进骨再生、多发性硬化症等治疗中获得较好的治疗效果[38]。这一研究解决了干细胞在人体内数量有限的难题，使得干细胞在再生医学领域中拥有更广阔的发展潜力。进一步研究发现转录因子c-Myc通过激活多种细胞周期相关基因，如特异性周期蛋白D1和细胞周期蛋白依赖性激酶4来促进细胞周期的进程，特别是从G1期到S期的转换。而Oct4是维持干细胞多能性的关键转录因子，能够激活多种多能性相关基因，同时抑制分化相关基因的表达。利用慢病毒将过表达Oct4/c-Myc的基因整合入间充质干细胞中可促进细胞存活和新生血管形成，改善其治疗心肌缺血的效果[39]。过表达Oct4/Sox2的脂肪来源间充质干细胞在传代晚期拥有更显著的代谢活性及增殖能力，并且细胞的干性维持较好[40]。在人胚胎干细胞中过表达多能细胞特异性基因Nanog可以使细胞在多次传代后仍保持较强的多能分化潜力[41]。通过上述增强增殖分化基因表达的方法，细胞可以在体外维持更长久的增殖分化能力，但这种方法效率低并且技术难度要求较高，可用细胞数量有限，实验室和临床治疗之间仍然有很大的差距。另一种途径是通过调整细胞周期相关基因延缓细胞衰老，其中端粒缩短是细胞衰老的主要内在因素，而端粒反转录酶是负责延长端粒的一种核蛋白反转录酶，可向真核细胞染色体末端添加TTAGGG序重复列从而延长端粒。然而，随着年龄的增长，端粒酶活性趋于下降，端粒酶功能丧失加速了衰老的进展，并增加了癌症发病率[42]。因此，可以通过过表达端粒反转录酶基因从而延长端粒，延缓细胞衰老[43]。在动物模型中，过表达端粒反转录酶的间充质干细胞在心肌缺血再灌注中能更好地保护心脏基质细胞的活力并促进其向心血管表型发展，并且能促进细胞成骨分化[44]。此外，过表达巨噬细胞迁移抑制因子可使来自老年供者的间充质干细胞恢复活力[45]。过表达缺氧诱导因子1α可提高缺氧损伤干细胞的血管生成能力、迁移功能和增殖能力，同时在急性心肌梗死模型中通过促进新血管形成和抑制纤维化来改善心脏功能[46]。胰岛素增强子结合蛋白1是一种LIM同源结构域转录因子，在骨髓来源间充质干细胞中过表达胰岛素增强子结合蛋白1可以改善急性心肌梗死大鼠的心脏功能并促进血管生成[47]，改善肾缺血再灌注损伤大鼠的肾功能，抑制了肾小管细胞凋亡、炎症和氧化应激[48]。利用CRISPR-Cas9技术敲除组织相容性复合物Ⅰ和Ⅱ编码CIITA基因，能够显著降低人胚胎干细胞在异体移植中的免疫原性，逃避免疫排斥反应，从而提高干细胞在体内移植后的存活率[49-50]。Bcl-2作为一种癌基因，有明显抑制细胞凋亡的作用。过表达Bcl-2可使间充质干细胞凋亡减少32%，血管内皮生长因子分泌增加60%以上，在急性心肌缺血动物模型中，与单独使用间充质干细胞治疗相比，移植过表达Bcl-2间充质干细胞后心肌梗死面积小17%，功能恢复显著。氧化应激是引起细胞体外衰老的重要因素，提高细胞抗氧化能力对维持细胞体外活性也十分重要，因此，移植过表达超氧化物歧化酶2的骨髓来源间充质干细胞增强了超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶活性，抑制了丙二醛和活性氧的产生，改善肝缺血再灌注损伤[51]。 表观遗传重编程在恢复衰老干细胞活性方面也有重要作用，即通过改变非编码物质的表达，包括DNA甲基化、组蛋白修饰及非编码RNA介导的遗传修饰从而改变细胞命运。间充质干细胞的成骨、成脂、成软骨分化受DNA甲基化和去甲基化的调节，高甲基化会维持细胞多能性基因的表达，使用DNA甲基转移酶抑制剂地西他滨能够降低p16INK4a 启动子的甲基化水平，可以显著提高间充质干细胞的增殖能力和克隆形成能力，降低衰老标志物的表达，同时刺激干细胞分化[52]。组蛋白乙酰化是一种重要的表观遗传修饰，通过在组蛋白的赖氨酸残基上添加乙酰基团来调控基因表达。抑制组蛋白去乙酰化酶就可以增强间充质干细胞的神经分化效率[53]。miRNAs是细胞衰老相关基因表达程序中的关键调节因子[54]。其中miR-195直接靶向端粒反转录酶基因的3 '-非翻译区，负向调控细胞的生存分化能力，敲低miR-195能显著增加衰老间充质干细胞中端粒反转录酶的表达，诱导端粒延长，逆转间充质干细胞衰老[55]。miR-155-5p通过抑制骨髓来源间充质干细胞中的线粒体裂变，增加线粒体融合，导致间充质干细胞衰老。敲除miR-155-5p可使衰老的间充质干细胞恢复活力并增强急性心肌梗死后的心肌细胞保护能力[56]。miR-29c-3p、miR-29b-3p和miR-130b通过靶向不同的下游途径来恢复间充质干细胞衰老[57-59](表1)。"

通过上述基因工程，可在细胞基因及表观遗传学上改造间充质干细胞，使其获得更强的增殖分化及抗凋亡能力。但在安全性方面，病毒载体介导的基因转染可能会导致插入突变，影响细胞的基因稳定性和功能，基因编辑技术(如CRISPR/Cas9)可能会产生脱靶效应，导致非目标基因的意外突变。过度的基因操作可能会导致间充质干细胞的多能性下降，影响细胞的分化能力。因此需要进一步优化基因工程技术，提高其安全性和有效性，以推动基因工程间充质干细胞在临床治疗中的广泛应用。 2.3.2   药理学方法   近年来，药物干预作为一种有效手段，逐渐被应用于间充质干细胞的体外培养。通过添加特定的药物或小分子化合物，可以调节间充质干细胞的增殖、分化、凋亡和免疫特性[60]。雷帕霉素可通过激活蛋白激酶B/哺乳动物雷帕霉素靶蛋白信号通路增加细胞克隆率，抵抗氧化应激，减少线粒体功能障碍，延缓细胞衰老[61-62]。5-甲氧基色氨酸和褪黑激素可通过保护线粒体完整性和功能并减少活性氧产生来逆转间充质干细胞衰老[63]。白藜芦醇是一种天然的植物多酚，可激活沉默信息调节因子1，抑制p53和p16的表达，从而发挥抗衰老的作用[64]。维生素C促进衰老小鼠骨髓间充质干细胞的体外增殖，延缓复制性衰老[65]。使用达沙替尼处理衰老间充质干细胞，能使细胞获得更好的成脂分化能力，并清除衰老细胞[66]。槲皮素干预能显著增强骨髓间充质干细胞的增殖能力，提高碱性磷酸酶活性，促进细胞外基质产生、矿化及成骨分化[67]。在二甲双胍处理的脂肪间充质干细胞中，衰老相关标志物和活性氧减少，增殖潜能增加，成骨分化潜能降低，成脂分化潜能增加，提高了细胞在慢性肾病中的治疗效果[68]。去铁胺可通过增加缺氧诱导因子1α蛋白的稳定性来促进祖细胞的动员和归巢[69]。2，4-二硝基苯酚预处理的间充质干细胞可通过促进血管生成改善心脏功能并减少心脏重构[70]。干扰素γ预处理能增强间充质干细胞的免疫抑制，减轻移植物抗宿主病，提高了间充质干细胞移植后的存活率[71](表2)。"

尽管某些药物对间充质干细胞的体外培养有改善作用，但过高浓度的药物或长时间与干细胞共培养会损害间充质干细胞的功能。因此，在使用药物干预间充质干细胞时需注意不同来源的间充质干细胞对药物敏感性不同，并且长期使用表观遗传药物(如5-氮杂胞苷)可能增加基因突变风险，因此需要对不同药物进行预实验确定最佳浓度和作用时长，对其进行剂量及时间优化。 2.3.3   优化体外培养环境   细胞培养时的温度、氧浓度、pH值、渗透压、气压、生物力学和电磁都紧密关联着细胞的命运。选择合适的物理化学环境对于干细胞长时间体外培养至关重要，更决定了间充质干细胞规模化量产的执行标准。首先，在培养器皿方面，间充质干细胞的分离和扩增通常在具有一定硬度的塑料器皿上进行，尽管有着优异的细胞黏附性能，但在长期培养后仍会出现细胞增殖能力和分化潜能丧失。调节基质刚度和底物形貌能影响细胞增殖、表型维持和分化能力[72]，在具有相对刚性及适当尺寸的微槽中能更好地维持间充质干细胞的未分化状态和多能性[73]。然而二维培养难以模拟自然器官系统的“细胞-细胞”和“细胞-细胞外基质”之间基本的信号通讯，以及细胞对动态机械刺激的反应，因此提出构建三维支架或形成类器官环境进行三维培养。与传统贴壁培养相比，三维培养能更好地模拟细胞在体内的生长环境，提供更接近生理条件的细胞行为和研究模型，具有培养效率更高的优势[74]。脂肪间充质干细胞三维培养后干性相关基因、抗衰老相关基因和端粒酶表达发生明显变化[75]，细胞形态、增殖、分化能力和能量代谢较二维培养效果更好，表现出比二维培养更强的再生能力[76]。三维球体培养过程可减少细胞间隙、增加细胞间黏附和细胞外基质分泌[77]，诱导成骨整合素和钙黏蛋白表达增加，提高间充质干细胞的成骨能力[78-79]。 除了球体培养增加细胞间通讯功能外，运用天然和合成生物材料构建细胞支架可以更好地模拟间充质干细胞在体内的环境。通常采用的生物材料都是高度可调、均质和无细胞的材料，并且具有高的批次间一致性，可使间充质干细胞的生产更加规范。常用的支架材料有琼脂糖、胶原、纤连蛋白、明胶、层粘连蛋白和玻连蛋白，特定类型的基质或支架适合于对培养细胞引发特定类型的形态学和生理学改变[80]。Ⅰ型胶原是三维培养系统中常用的基质，具有易于处理、低成本和活细胞操作灵活性等优势[81]。多孔明胶材料为干细胞在悬浮培养中提供黏附位点，从而促进细胞增殖和分化[82-83]。有研究团队开发出一种名为Nichoid的微结构支架，能够使间充质干细胞保持更高水平的干性，而无需添加外源性因子[84]。使用偏二氟乙烯薄膜培养物对间充质干细胞进行干预，可以在保持干性的同时进行高效、直接的抗衰老扩增，在大规模生产间充质干细胞方面具有巨大潜力[85]。 培养基的选择也至关重要，不同的血清类型及浓度也可影响体外间充质干细胞的分离、扩增和分化。传统的间充质干细胞培养方案依赖于体积分数10%胎牛血清促进细胞黏附并提供必需的营养和生长因子，然而，使用动物血清可能会带来异种污染、病毒、朊病毒、细菌感染的风险并引起批次间差异[86]。因此，近年针对人间充质干细胞扩增的培养基配方通常采用无血清培养基，通过在培养基中额外添加细胞因子促使间充质干细胞体外生长[87]，此方法旨在减少变异性，增强可追溯性。另有研究表示含有血清的培养基能为间充质干细胞提供与体内更相似的微环境[88]，并指出含有原始组织的培养基能更好地保持间充质干细胞的干性[89]，但想要规范化生产人间充质干细胞，未来的方向仍然是无血清培养。 2.3.4   低氧预处理   在体外培养中，间充质干细胞通常在含体积分数21%氧气的培养箱中培养，实测该氧气体积分数显然高于间充质干细胞在体内微环境中的氧气体积分数。过量的氧气会增加氧化应激和相关信号通路的激活，最终导致细胞衰老。间充质干细胞的低氧预处理限制了氧化应激、DNA损伤、端粒缩短和染色体畸变的关键生理过程[90]。测序分析低氧(3%)和常氧(21%)条件下培养间充质干细胞的RNA表达谱，发现二者参与细胞周期调控的遗传物质不同，在低氧环境下分化能力下降，但增殖能力明显提升[91]；缺氧和复氧过程促进间充质干细胞中促生存基因和各种营养因子分泌，从而提高了细胞增殖能力[92-93](表3)。"

2.3.5   调节细胞因子   构建适合干细胞生长的微环境是维持干细胞功能特性最重要的一环，不同的微环境条件决定细胞的命运。通过调控细胞因子的表达或外源性添加特定细胞因子，可以增强人间充质干细胞的增殖、分化、迁移和归巢能力，延缓细胞衰老，从而提高间充质干细胞在再生医学和临床治疗中的应用效果。基质细胞衍生因子1预处理通过增强细胞增殖、迁移和存活保护间充质干细胞，抑制过氧化氢诱导的细胞凋亡，同时能上调碱性成纤维细胞生长因子、血管内皮生长因子以及蛋白激酶B和细胞外调节蛋白激酶的表达[94]。将转化生长因子β添加到脂肪形成培养基中能促进人间充质干细胞从成脂分化转变成骨分化[95]。选择的生长因子和培养基补充剂可以有效维持人间充质干细胞自我更新和分化潜能，补充细胞因子的培养基均提高了增殖速率并显著增加了在达到衰老之前的细胞倍增数，为人间充质干细胞在再生医学和临床治疗中的应用提供了重要支持[96]。  间充质干细胞衰老是一个复杂而综合的问题，大多数细胞调节过程不是独立的事件，因此需要多种不同的方法来缓解或预防衰老。不同的干预方式均存在一定的优缺点(表4)，各种方式间可发挥协同作用共同改善间充质干细胞的体外培养效率，DNA甲基转移酶抑制剂5-氮杂胞苷/缺氧模拟剂去铁胺预处理促进了人骨髓间充质干细胞增殖、组蛋白乙酰化和低甲基化，细胞外基质胶原蛋白产生增加，细胞成骨分化能力增强，并且二者预处理骨髓间充质干细胞来源细胞外囊泡也促进了人骨髓间充质干细胞的成骨分化和矿化，增强了促骨骼修复的治疗效果[93]。尽管干扰素γ预处理通常用于在移植前激发间充质干细胞的免疫调节活性，但预处理的瞬时效应可能会限制间充质干细胞有效调节免疫反应的潜力。通过在三维间充质干细胞培养体系中持续呈递干扰素γ可精确调节和诱导免疫调节活性，从而提高间充质干细胞的疗效[97]。此外，应用生物材料联合药理学方案，控制药物释放，从而延长细胞暴露于小分子的持续时间，保证药物干预浓度，精准调控干细胞受干预的时间和剂量，如使用明胶包封微粒装载间充质干细胞可以提高持续作用时间，可根据其组成、聚合物分子质量、载药量和释放能力进行调整[98]。"