胚胎干细胞
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图1｜相同数量胚胎干H1和H9系细胞正常培养24，48，72 h光镜图片(倒置显微镜，×400)
结果：随着培养时间的增加，光镜下可见人胚胎干H1和H9系细胞数量随之增多，细胞间隙变小，形态较前无变形，镜下可见有少量漂浮死亡细胞，各孔细胞生长状态良好。H1和H9系细胞计数显示在24，48，72 h细胞数量呈指数增长(P < 0.001，P < 0.000 1)，同一时间不同系之间细胞数量相似，无明显差异(P > 0.05)。ELISA检测结果显示培养基中MIF水平相对恒定，并没有呈现细胞数量依赖性，H1和H9系之间也并无显著差异(P > 0.05)，见图1。
图2｜H1和H9细胞各相关因子免疫荧光检测结果(×1 000)
结果：免疫荧光染色结果如图2所示，DAPI染胞核呈蓝色荧光，绿色荧光的深浅表示胚胎干细胞中MIF的表达水平，绿色越深，分布越密集，表明MIF表达水平越高，红色荧光的深浅表示MIF相关受体CD74、CD44、CXCR2、CXCR4、CXCR7在胚胎干细胞中的表达水平，红色越深，分布越密集，表明相关受体表达水平越高。
图5｜ 免疫荧光共聚焦显微镜检测互作蛋白巨噬细胞迁移抑制因子(MIF)和CXCR7共定位(×1 000)
结果：将鼠源MIF抗体和兔源CXCR7抗体分别孵育鼠源和兔源的荧光二抗，通过荧光显微镜可见H9细胞上MIF和CXCR7分别激发绿色和红色荧光，细胞核通过DAPI染色后激发蓝光荧光，最后应用 Photoshop 软件对3张不同颜色的荧光图片进行叠加，组合后的图片可见MIF与CXCR7表达位置重复，说明两种蛋白存在共定位，见图5A，另外，将组合图片进行荧光定量分析(图中箭头所示)，发现MIF在H9细胞胞膜、胞质均表达，CXCR7主要在胞膜表达，这在空间上为2种蛋白的互作提供了可能，见图5B。
图6｜不同浓度的巨噬细胞迁移抑制因子抑制剂ISO-1对H9细胞凋亡的影响(TUNEL，× 400)
结果：与空白组相比，随着ISO-1浓度(12，48，192 μmol/L)的增加，细胞凋亡率明显增加(P < 0.01)，并伴随一定的剂量依赖性，见图6。
图7｜不同质量浓度的巨噬细胞迁移抑制因子(MIF)对ISO-1诱导的H9细胞凋亡的影响(TUNEL，× 400)
结果：与ISO-1(192 μmol/L)组相比，在加入不同质量浓度的MIF(30，100，300 μg/L)共孵育24 h后，TUNEL法检测结果显示细胞凋亡率显著减少(P < 0.01)，表现出一定的剂量依赖性，见图7。