根据图像可以直观地发现，当钛酸钡含量在0%-20%时，钛酸钡粒子在聚乳酸基体中分散程度均可；当含量达30%时，复合材料中钛酸钡出现明显团聚现象；当含量为40%时，团聚物进一步增多。这说明了随钛酸钡粒子的增多，纳米级钛酸钡容易团聚，使其不能被很好地分散在聚乳酸基体中，从而在电镜下材料表面出现团聚亮点。有研究将纳米钛酸钡进行多种方式的表面改性处理，再混入聚合物基体中，已达到充分分散粒子减少团聚的目的[27]。
2.2   各组复合薄膜材料的X射线衍射结果    见图2。

由图2可知，钛酸钡粒子在2θ=31.4°呈现较强的晶相衍射峰(图中b区域)。与0%组即纯聚乳酸薄膜材料相比，其他含不同比例钛酸钡的各组复合膜显示出明显的钛酸钡特征峰值(b、c区域均为特征峰)。根据衍射峰特征显示，极化前后各组材料分散在聚乳酸基体中的钛酸钡粒子结构没有发生变化，表明钛酸钡粒子在复合材料制备中具有稳定性；但极化后的复合薄膜中钛酸钡粒子的晶相显示出比未极化组中钛酸钡粒子更强的特征峰，这可能是由于电晕极化提高了聚乳酸基体的结晶度和聚合物链段的规律性[1]。同时，纯聚乳酸在2θ=16.6°附近出现弥散的衍射峰(图中a区域)，说明纯聚乳酸膜中的聚合物分子聚集成一个有序结构[28]。当钛酸钡质量分数为5%和10%时，复合材料中的衍射峰位置与纯聚乳酸膜相比无明显偏移。这一结果显示钛酸钡的加入并没有改变衍射峰的位置和数量，说明以上两组钛酸钡含量对聚乳酸晶型结构基本没有影响。但当钛酸钡质量分数为20%，30%和40%时，复合膜中的X射线衍射特征峰与纯聚乳酸相比发生了一定改变，说明钛酸钡粒子的加入破坏了聚乳酸有序排列的分子结构，降低了其分子链的排列密度，当材料受到冲击后，分子链段活动空间增加，冲击强度增加[29]。
2.3   各组复合薄膜材料的水接触角检测结果    见图3。

由图3可知，钛酸钡含量和电晕极化处理对材料亲水性的影响不同。未极化复合薄膜材料的接触角比较差异无显著性意义(P > 0.05)，这表明该复合材料极化前的亲水性不随钛酸钡含量的变化而改变。极化后处理后，极化30%，40%组的接触角较其他极化组大(P < 0.05)，同时极化30%，40%组的水接触角均大于极化前(P < 0.05)，亲水性较差。结果表明，钛酸钡含量不同，材料表面粗糙程度不同，当钛酸钡含量为30%及以上时，大体可观察到材料表面粗糙程度更明显，且根据扫描电镜高倍数图像可观察到钛酸钡含量为30%及以上时团聚现象更明显，结合X射线衍射结果分析，高压电晕极化后材料表面分子链密度降低，产生断裂并堆积在表面形成隆起，形成纳米级孔隙，这种纳米级粗糙也会影响材料的亲水性[29]。

由X射线衍射结果可知，5%，10%组聚乳酸基体特征衍射峰与纯聚乳酸相比较并未发生变化，所以极化对于其表面分子链影响不大，极化前后水接触角比较差异无显著性意义(P > 0.05)。20%组的衍射峰虽发生改变，其极化后表面水接触角本应增大，但实际结果却无统计学差异(P > 0.05)，这可能与该比例的钛酸钡/聚乳酸复合材料具有良好的分散性和最高的压电常数有关，已有研究证实生物压电材料压电常数越大，水接触角越小、亲水性越好[30]。

用接触角测量仪测试各组材料的静态水接触角统计结果，见表2。



2.4   各组极化处理复合薄膜材料的压电常数结果   已知骨的压电常数为4-11 pC/N[25]。如表2所示，在极化后1周测定各组材料压电常数，可匹配骨骼压电常数范围的组别为10%，20%，30%和40%组，其中20%组的压电常数最高，平均值为(7.03±0.26) pC/N。在一定范围内，随着钛酸钡含量的增加，材料的压电常数升高、压电性能增强。但当钛酸钡含量超过20%时，材料的压电常数在原有基础上不再进一步提高，这可能是由于钛酸钡凝结成团导致膜性能降低，从而极化效果减弱。但是该结果不能代表各组材料压电性能的衰减程度与时效性。
2.5   筛选较佳配比的复合薄膜材料   根据材料理化性能检测结果，从材料表面特征和钛酸钡分散状况来看，未极化0%，5%，10%，20%组有良好的表面特征，表面钛酸钡分散较为均匀；根据X射线衍射材料的晶相分析来看，极化后的复合材料具有更强的衍射峰；根据水接触角测试分析，当钛酸钡含量在30%和40%时，极化会使材料表面亲水能力降低；根据静态压电常数测试得出极化20%组压电常数d33最高，为(7.03±0.26) pC/N。所以，根据上述性能综合选择出极化20%组为实验组，选择未极化20%组、极化0%组和未极化0%组为对照组进行后续细胞实验。
2.6   复合压电薄膜材料的细胞相容性
2.6.1   细胞增殖实验结果   见表3。

在培养1，4，7 d时，各组细胞增殖吸光度值均呈现增加趋势，说明随着时间的延长细胞数量呈增长趋势；培养第1天时，各组细胞增殖吸光度值比较差异无显著性意义(P > 0.05)；培养第4天时，各组细胞增殖吸光度值与空白对照组比较差异均无显著性意义(P > 0.05)，极化20%组细胞增殖吸光度值高于未极化20%组(P < 0.05)；培养第7天时，极化20%组细胞增殖吸光度值高于空白对照组、未极化0%组和未极化20%组(P < 0.05)，与极化0%组比较差异无显著性意义(P > 0.05)。结果表明，各组材料与空白对照组相比并不影响细胞增殖，细胞增殖能力均良好。其中极化20%组促细胞增殖能力较空白对照组和未极化组好，这是由于极化使压电材料表面带有一定稳定排列的电荷，而电荷产生的电刺激在一定程度上可以促进细胞的增殖[31]。
2.6.2   细胞黏附观察结果

荧光染色：共培养12 h后，各组材料表面的细胞黏附状况，见图4。荧光染色结果显示，未极化0%组、未极化20%组和极化0%组材料表面的细胞黏附数量无明显差异，细胞呈三角形，少数呈长梭形；极化20%组材料表面的细胞黏附数量较多，且细胞形态呈长梭形居多，有明显的伪足。

扫描电镜观察：图5为极化前后各组材料表面细胞黏附12 h后的扫描电镜图像，由图可知，未极化0%组细胞呈三角形，伪足不明显；未极化20%组细胞呈长梭形，具有一两条伪足；极化0%组细胞开始铺展，体积增大，且伪足数量增多；极化20%组细胞呈多边形且伪足明显，较未极化20%组、极化0%组和未极化0%组体现出更好的细胞黏附能力。



2.6.3   碱性磷酸酶活性检测与染色结果   见图6，7。

各组材料诱导MC3T3-E1细胞成骨分化4，7 d后的碱性磷酸酶活性分析结果，见表4。各组7 d时的碱性磷酸酶活性较4 d时均有升高。培养第4天时，极化20%组碱性磷酸酶活性明显高于其他3组(P < 0.05)。培养第7天时，极化20%组碱性磷酸酶活性增高更加显著，明显高于其他3组(P < 0.05)，且极化0%组碱性磷酸酶活性要高于未极化0%组，表明极化后的材料对细胞成骨分化更为有利。

碱性磷酸酶染色结果显示，培养第4天时，未极化0%组、极化0%组和未极化20%组碱性磷酸酶染色情况无太大差异，极化20%组碱性磷酸酶染色阳性细胞数量明显较其他3组多；培养第7天时，极化20%组碱性磷酸酶染色效果最好，极化0%组次之，未极化0%组和未极化20%组无明显差异；同时，根据染色结果能观察出极化后的两组细胞明显呈极性生长，未极化两组细胞生长状态杂乱无规律。上述染色结果进一步验证了碱性磷酸酶活性检测的结果。
2.7   复合压电薄膜材料的细胞相容性   由细胞增殖实验、黏附检测与碱性磷酸酶活性检测结果可知，钛酸钡/聚乳酸复合压电薄膜材料具有较好的细胞相容性。

生理电位在人体骨再生过程中扮演着重要角色，以往的骨组织工程研究中仅强调了模拟骨的结构、形态、机械和化学性质等特性，却忽略了恢复生理电微环境这一要点，所以在骨组织工程生物材料的设计中强调模拟内源性电势，开发高效生物压电材料，予以细胞适当电刺激，从而促进骨再生这一概念是非常值得研究的[1-3]。

生物压电材料具备良好的生物相容性及压电效应，可以模拟骨组织的生理电微环境，从而促进骨的再生和重建[3-8]。钛酸钡(BaTiO3)作为一种性能优良的压电陶瓷，在骨组织工程应用方面具有广阔的前景[9]。现有证据表明，钛酸钡的压电特性对自然骨形成途径有积极影响，使其在负重组织工程应用中得到更广泛的应用[10-11]。钛酸钡虽不可被人体吸收，但其可以在人体中长期存在且无害。EHTERAMI等[12]制备了一种采用明胶和纳米羟基磷灰石包覆的多孔钛酸钡基支架，通过体外实验证明了该支架能够促进细胞的黏附与增殖，具有良好的生物相容性，可应用于组织工程的研究中。LIU等[11]将压电陶瓷材料钛酸钡涂覆于多孔钛合金支架表面，发现其具有良好的力学性能和电微环境，并可促进间充质干细胞的增殖、迁移和成骨分化，同时促进血管生成。

有机压电材料又称压电聚合物，其中以聚偏氟乙烯及其共聚物[13]、聚羟基丁酸酯及其共聚物[14-15]、聚L-乳酸等聚合物在组织工程的研究最为广泛[5]。聚L-乳酸是一种优良的可降解生物压电材料，其不需烧结即可产生压电效应[4]。聚乳酸材料具有较好的力学强度、生物相容性，有研究证实极化后的聚乳酸材料具有一定的压电性和抗菌性[16]。LI等[17]制备了钛酸钡/左旋聚乳酸随机取向排列的电活性纤维支架，发现其与天然骨的介电常数匹配，可显著促进大鼠骨髓间充质干细胞的多边形扩张，促进早期成骨分化。通常，聚乳酸中C=O 偶极子方向随机分布不具备压电性，在经过外加电场或机械拉伸等处理后可产生剪切压电性[18]。

近年来有关压电复合材料的研究逐渐兴起。SAEIDIK等[19]制备了一种高压电系数的多孔钛酸钡/纳米生物玻璃复合支架，其具有良好的抗压强度和生物相容性，并能在一定程度上促进细胞的黏附与增殖。这些结果表明，高度多孔钛酸钡支架在组织工程中应用于骨组织修复和再生方面具有很大的潜力。也有研究采用固相烧结法制备了钛酸钡/硅酸钙复合生物活性压电陶瓷，经压电性能测试、体外矿化能力检测和人体成纤维细胞共培养证实了其具有良好的压电性和生物活性，为骨修复材料提供了新的选择[20]。上述材料虽具有一定的抗压强度，但因其弹性模量较高不能完全满足骨修复材料力学性能的需求，所以近年来有研究将钛酸钡纳米颗粒与一些具有良好柔韧性和可加工性的高分子聚合物复合，以达到制备兼有两者优良性能的压电复合材料这一目的[1，21-24]。一些高分子材料虽有良好的可塑性和可加工性，但不具备理想骨组织工程材料中可降解这一特性，所以骨组织引导膜类材料需要考虑二次手术取出这一问题，骨支架类要考虑其在体内长期的生物安全性问题。针对这些问题，PROKHOROV等[25]将过氧化氢改性的钛酸钡粒子与壳聚糖复合制备了一种可降解压电复合膜材料，并研究了其电学特性和生物相容性，结果表明该复合膜具备良好的压电性能和生物相容性，可为后期引导性骨组织再生膜研究提供一定的理论基础。

在聚合物基质中使用纳米颗粒作为填料，开发出模拟骨组织特性的生物材料，正日益引起人们的兴趣[26]。此次实验结合了聚乳酸与纳米钛酸钡在生物学性能、力学性能和电学性能中的优势，将具有优良力学性能和极化后具有一定压电效应的可降解材料聚乳酸作为基体，与生物相容性良好的无铅压电陶瓷钛酸钡采用简单的溶液浇铸法制备成复合薄膜，再经过可应用于大面积材料极化处理的电晕极化法进行极化，从而得到钛酸钡/聚乳酸复合压电薄膜材料，这一方案解决了聚偏氟乙烯类压电聚合物在体内应用时的不可降解这一问题，避免了二次手术取出给患者带来的痛苦，同时也避免了临床常用的引导性骨组织胶原膜力学性能不佳这一问题，该薄膜材料制备方法及处理工艺简单可靠，有望成为一种新型的引导性骨组织再生膜材料。
中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料；口腔生物材料；纳米材料；缓释材料；材料相容性；组织工程

1.1   设计   材料表面特性实验，体外细胞学实验，组间数据比较采用方差分析及t检验。
1.2   时间及地点   实验于2021年3-10月在华北理工大学口腔医学院实验室完成。
1.3   材料   聚乳酸(4032D，美国)，钛酸钡(BaTiO3，100 nm，南京宏德)，钛酸钡、聚乳酸材料的理化性能，见表1。

小鼠前成骨细胞MC3T3-E1(上海生命科学园细胞库，中国)；二氯甲烷、无水乙醇(分析纯，天津永大)；电子天平(AR224CN，中国)；集热式磁力搅拌器(JK-MSH-Pro-5B，中国)；电热真空干燥箱(DZG-6050SA，中国)；超声波清洗机(JP-080ST，中国)；电晕极化装置(实验室自制)；X射线能谱仪(APD 2000，意大利)；哈科接触角测量仪(HARKE-SPCA，中国)；冷场发射扫描电子显微镜(S-4800型，日本日立)；准静态d33测量仪(LC2730A，上海蓝巢)；胎牛血清(Cegrogen，德国)；DMEM 培养基(Gibco公司，美国)；胰蛋白酶、地塞米松、抗坏血酸、β-磷酸甘油钠、碘化丙啶(Sigma公司，美国)；2.5%戊二醛固定液(Labcoms公司，中国)；40 g/L多聚甲醛(上海化学试剂厂，中国)；0.5%Triton-X(上海索宝生物科技有限公司，中国)；CCK-8试剂盒(北京庄盟，中国)；碱性磷酸酶定量试剂盒、BCA蛋白定量试剂盒、碱性磷酸酶染色试剂盒(碧云天公司，上海)；酶标分析仪(HBS-1001，上海永创)；光学倒置相差显微镜(YJ-23BZEISS，德国)；体视显微镜(Stemi 508，德国)。
1.4   实验方法   
1.4.1   复合薄膜材料的制备   根据薄膜材料钛酸钡与聚乳酸质量比不同分为6组(n=5)：0%组，钛酸钡/聚乳酸=0/100；5%组，钛酸钡/聚乳酸=5/95；10%组，钛酸钡/聚乳酸=10/90；20%组，钛酸钡/聚乳酸=20/80；30%组，钛酸钡/聚乳酸=30/70；40%组，钛酸钡/聚乳酸=40/60。

将6份质量为3.5 g的聚乳酸粉末溶于6份30 mL二氯甲烷中得到6组质量分数约为8%的聚乳酸溶液。将钛酸钡粉末按照如上比例(质量依次为0，0.184，0.389，0.875，1.500，2.333 g)均匀分散于上述聚乳酸溶液中，超声震荡5 min后，置于磁力搅拌器上恒温搅拌6 h。采用溶液浇铸法将混合溶液浇铸于干燥洁净的玻璃磨具上成膜，常温下自然干燥24 h得到钛酸钡/聚乳酸复合薄膜材料。无水乙醇中浸泡去除残留有机溶剂，去离子水洗涤3遍，放入真空干燥箱内30 ℃干燥6 h，得到厚度为80-100 μm的均匀薄膜。使用实验室自制电晕极化装置对各组复合薄膜材料进行电晕极化处理。
1.4.2   复合薄膜材料的理化性能检测

薄膜表面形貌观察：将极化处理前的薄膜材料用打孔器剪裁成直径10 mm的圆片，采用扫描电镜观察薄膜材料的微观形貌。

X射线衍射分析：将极化处理前后的薄膜材料用打孔器剪裁成直径10 mm的圆片，采用X射线衍射仪分析材料的晶相结构。

亲水性检测：将极化处理前后的材料固定于载玻片上，采用接触角测量仪分析材料的亲水性能。

压电性能检测：将极复合薄膜材料裁剪成4 mm×4 mm的正方形，每组随机选择5个样品，使用实验室自制电晕极化装置进行极化处理，用准静态d33测试仪直接测量极化后各组薄膜材料的压电常数，每个样品取5个点进行测量，取平均数。
1.4.3   复合薄膜材料的细胞相容性    

细胞培养：使用含体积分数10%胎牛血清、100 U/mL青霉素和0.1 g/L链霉素的DMEM 培养基完全培养基培养小鼠前成骨细胞MC3T3-E1，细胞培养24 h开始换液，每2 d换液一次。细胞在指数生长期占满培养瓶底面积的80%左右，按1∶2的比例进行传代，三四天传一代，取第4代细胞进行实验。

细胞增殖实验：采用CCK-8法检测薄膜材料的细胞毒性。将极化处理0%，20%与未极化处理0%，20%的复合薄膜材料裁剪成直径为6.5 mm的圆形，紫外照射消毒后转移至96孔板中；每孔接种2×103的MC3T3-E1细胞，置于37 ℃、体积分数5%CO2培养箱中持续培养，2 d换液一次。以单独培养的细胞为空白对照。共培养1，4，7 d后，每孔加入10 μL CCK-8液，避光孵育2 h，将待测液移至新的96孔板中，酶标仪检测450 nm波长各组的吸光度值。

细胞黏附实验：将极化处理0%，20%与未极化处理0%，20%的复合薄膜材料裁剪成直径为10 mm的圆片，紫外照射消毒后转移至48孔培养板内，每孔接种4×103的MC3T3-E1细胞。常规培养12 h后取出材料，PBS轻轻冲洗3次。①荧光染色：多聚甲醛固定1 h，以PBS清洗3次，每孔加入200 μL的0.5%Triton-X，静置20 min，以PBS漂洗3次，每次5 min。每孔加入200 μL荧光PI染液，染色5 min，使用免疫荧光显微镜观察每个试件上细胞的黏附和生长情况，并随机选取一个视野进行图像采集。②扫描电镜观察：以2.5%戊二醛电镜专用固定液固定3 h，PBS清洗，梯度乙醇脱水，最后真空干燥12 h。表面喷金固定，扫描电镜下观察细胞在材料表面的黏附和形态。

细胞成骨分化能力检测：将极化处理0%，20%与未极化处理0%，20%的复合薄膜材料置于48孔板底部，采用自制无菌塑料固定环固定，每孔接种4×103的MC3T3-E1细胞。24 h待细胞黏附后弃旧培养基，加入含1.5%成骨诱导液的培养基，成骨诱导液由地塞米松、抗坏血酸、β-磷酸甘油钠按比例配置，每2 d换液一次。①碱性磷酸酶活性测定：细胞接种后第4，7天时吸弃培养液，PBS清洗后加入双蒸水，用超声细胞破碎仪破碎30 s，-80 ℃冰箱冻融过夜裂解细胞，轻轻刮拭材料表面后，用1.5 mL EP管收集裂解下细胞碎片，12 000 r/min低温离心15 min，收集上清液置于新的EP管中置于冰上操作。每孔取50 μL上清液置于96孔板，按碱性磷酸酶检测试剂盒说明按照比例加入检测试剂，避光孵育30 min，利用酶标仪于405 nm波长下检测各孔吸光度值。采用BCA试剂盒检测各组待测样品的蛋白浓度，计算细胞碱性磷酸酶活性。②碱性磷酸酶染色：为进一步验证实验结果，采用碱性磷酸酶染色进行相同时间点的定性分析。采用体视显微镜观察染色情况，随机选取视野进行图像采集。 
1.5   主要观察指标   复合压电薄膜材料的细胞相容性。
1.6   统计学分析   实验所得的所有定量数据均以x±s的形式表示，采用SPSS 26.0软件进行统计学分析，两组数据间比较采用student’s t检验，多组间数据的差异采用单因素方差分析(one-way analysis of variance，ANOVA)，Levene’s检验方差齐性，方差齐时采用Bonferroni法进行两组间差异比较，方差不齐时采用Dunnett’s T3方法进行两组间差异比较。检验标准设为α=0.05，P < 0.05认为差异有显著性意义。该文统计学方法已经华北理工大学统计学专家审核。

在引导性骨组织再生术中，屏障膜占据着主导地位，为了提高引导性骨组织再生的效果和成功率，有大量研究利用多种方法来制备多样的生物屏障膜进一步诱导成骨细胞的生长，提高骨质增生能力[32]。聚乳酸基复合屏障膜因其良好的生物学性能已被广泛研究[33-35]。

骨是天然的压电材料，压电常数范围为4-11 pC/N，压电在天然骨中的发现引起了人们对模拟生物电用于各种组织再生的广泛研究[25，36]。有关仿生电活性复合材料的研究也日益兴起，为其在骨组织再生领域的应用打下了基础[1，37-39]。

压电复合材料是通过物理或化学方法将不同类型电活性生物材料之间进行复合制备的一种材料，一般是在柔软的有机聚合物基底材料中嵌入各种形态的无机压电材料所构成，兼备两种材料的优良性能，可充分发挥电活性，具有模拟生物体生理电微环境的潜力[4]。将聚乳酸和钛酸钡混合制备的膜材料植入人体后不需要二次手术取出，所以，将钛酸钡与聚乳酸基高分子材料复合来制备一种生物可降解压电复合膜应用于骨组织工程研究这一策略是非常必要的。

此次实验采用溶液浇铸法制备了钛酸钡/聚乳酸复合压电薄膜材料，通过扫描电镜可以观察出该复合薄膜制备成功，X射线衍射分析证明了极化前后薄膜的纯相。水接触角测试结果显示，极化前复合材料的亲水性不随钛酸钡的含量而改变；极化处理后，30%和40%组水接触角较其他组接触角大，亲水性较差，这可能是由于极化后薄膜表面分子极性改变，分子链移动产生的纳米孔隙，造成材料亲水性下降。同时，材料表面粗糙程度不同，当钛酸钡含量为30%及以上时，材料表面粗糙程度更明显且钛酸钡在聚乳酸基体中出现明显的团聚，所以极化后其表面粗糙程度进一步增加，造成亲水性下降。压电常数测定结果证明了不同钛酸钡含量的复合材料极化后的压电性能有差异，具有统计学意义(P < 0.05)；10%，20%，30%，40%组具有良好的压电性能，能模拟人体骨组织的压电范围，其中20%组极化后压电常数最高，为(7.03±0.26) pC/N。综合上述材料理化特性，可选择出具有最佳性能的是极化20%组。细胞增殖实验说明各组材料均不影响细胞增殖，且极化20%组具有一定的促细胞增殖的能力。通过黏附实验观察细胞初期黏附数量与形态可发现，极化20%组细胞黏附数量较多，形态呈多边形，伪足明显。成骨分化测试结果显示，极化20%组具有更高的碱性磷酸酶活性，有利于细胞成骨分化。

此次实验采用溶液浇铸法成功制备出生物复合压电薄膜材料，其具有良好的细胞相容性和促细胞成骨分化能力，有望成为一种新型引导性骨组织再生屏障膜。此次实验数据可为后续动物实验、临床试验提供科学依据，实验的不足之处在于未进行动物体内成骨实验。
中国组织工程研究杂志出版内容重点：生物材料；骨生物材料；口腔生物材料；纳米材料；缓释材料；材料相容性；组织工程

文题释义：
压电效应：某些电介质在沿一定方向上受到外力的作用而变形时，其内部会产生极化现象，同时在其2个相对表面上出现正负相反电荷；当外力去除时，又会恢复到不带电的状态，这种现象称为正压电效应。相反，当在电介质的极化方向上施加电场，这些电介质也会发生变形，电场去掉后，电介质的变形随之消失，这种现象称为逆压电效应。具有压电效应的材料包括：压电陶瓷、压电聚合物和复合压电材料等。
MC3T3-E1细胞：全称为小鼠胚胎成骨细胞前体细胞，具有无限增殖的能力，在外界培养条件改变时可发生不同程度的分化。其提取自小鼠颅顶骨，可贴壁生长，被广泛应用于骨组织工程研究领域，是观察细胞成骨分化能力的一种优良细胞系。

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此次实验采用溶液浇铸法制备了钛酸钡/聚乳酸压电复合膜，在引导再生膜材料的屏障作用的基础上进一步模拟骨组织的压电效应，构建骨组织再生所需的电微环境，以恢复骨组织生理电位，研发了一种促进骨组织再生的新型生物压电复合材料。同时，该材料具有良好的生物相容性和一定的可降解性，为避免术后二次取出的伤害提供了可能。

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